1.靶細胞制備
取培養24~48h的靶細胞,洗滌3次,最后用完全RPMI-1640培養液調整細胞濃度至1×105/ml,備用。 2.效應細胞的制備
常規方法分離PBMC或小鼠脾細胞,洗滌3次,最后用完全RPMI-1640培養液調整細胞濃度至1×l07/ml。 3.效-靶細胞作用
將效應細胞和靶細胞各0.1ml(E/T=100∶1)加入40孔細胞培養板的孔中,每份標本設3復孔,同時設靶細胞自然釋放對照組和最大釋放對照組(0.1ml靶細胞+0.1ml 1%NP-40液),低速離心1000r/min,2min后,置37℃、5%CO2溫箱中孵育2h。 4.酶促反應
取出培養物,吸取各孔上清0.1ml加于另一培養板孔中,置37℃預溫10min,每孔加入新鮮配制的LDH底物溶液0.1ml,室溫避光反應10~15min,每孔加入1mol/L檸檬酸終止液30μl,以終止酶促反應。 5.結果計算
用酶聯檢測儀在570nm波長下讀取各孔OD值,并計算NK細胞活性。 NK細胞活性(%)=■×100% 展開 |