在添加 20 %（fetal bovine serum，FBS）的 Ham’s F12 培養中，原代細胞容易生長。在不改變培養條件的情況下，這些細胞增殖和分化，融合形成多個細胞核的肌管。這證明培養的細胞具有成肌性。
| 實驗方法原理 | 在添加 20 %（fetal bovine serum，FBS）的 Ham’s F12 培養中，原代細胞容易生長。在不改變培養條件的情況下，這些細胞增殖和分化，融合形成多個細胞核的肌管。這證明培養的細胞具有成肌性。 |
|---|
| 實驗材料 | D-PBSA |
|---|
| 試劑、試劑盒 | 轉運培養液生長培養液鏈酶菌蛋白酶液 |
|---|
| 儀器、耗材 | 尼龍網手術刀鋒利的長剪刀Petri培養皿培養瓶20ml離心管或一般容器血細胞計數板 |
|---|
| 實驗步驟 | 一、分離
1. 用手術刀切除活檢組織塊上的非肌性組織，然后用 D-PBSA 浸洗。
2. 稱重前，與肌纖維平行將切除活檢組織切成片，用沖洗。
3. 將組織片平行放入 Petri 培養皿蓋內，切成較薄的柱狀組織塊，然后切成 1 mm3 小塊。不要擠壓組織。也可在試管內用長剪刀將組織剪成小塊，應避免擠壓組織。
4. 用 D-PBSA 浸洗組織塊，靜置后吸去上清液。
5. 在 37°C 條件下，用鏈酶菌蛋白酶液（0.15 % 鏈酶菌蛋白酶（Sigma P-6911）、0.03% EDTA（Merck 8418）、20 IU/ml 青霉素和 20 μg/ml 鏈霉素（0.4% Eurobio PES3000），用 Ham F12 或 D-PBSA 配制，100ml）消化組織塊 1 h。每 1~3 mg 組織塊用 15 ml 鏈酶菌蛋白酶液。每間隔 10~15 min 輕輕搖晃試管。
6. 孵育后用吸管研磨組織塊。由于越來越多的細胞分離下來，培養液會逐漸變得渾濁。
7. 讓組織塊沉到試管的底部，形成沉降的組織塊（P1 ) 和上清液（S1）。
8. 用孔徑為 100 μm 的尼龍網將 S1 濾入 20 ml 離心管。輕輕搖晃或用吸管吹打上清液，使細胞混懸。
9. 離心（350 g，8~10 min）后，吸去上清液。
10. 準確加入 10 ml 生長培養液（Ham F12，添加 20 % FBS （Gibco 011-06290），200 ml），用帶有橡皮吸頭的吸管很輕微地混懸細胞。然后，用血細胞計數板計數細胞。
11. 用生長培養液稀釋細胞懸液，以約 1.5×104 個/ml 的細胞密度將細胞接種于培養瓶。從 1 g 健康供體活檢組織約獲得 1~2×105個細胞。
12. 將 15 ml 消化液加入 P1，在 37°C 水浴中孵育組織塊 30 min，并定時搖晃。
13. 用吸管吹打細胞懸液，使細胞分散。然后，用尼龍網過濾細胞懸液。用 20 ml 生長培養液浸洗濾網。
14. 離心（350 g，8~10 min）后，計數細胞，按上述方法接種細胞。
15. 將培養瓶移入濕潤的培養箱，在 37°C 和 5 % CO2 的條件下培養細胞。
二、維持培養
16. 接種后 24 h 很輕微地換培養液，以后每 3~4 d 換液 1 次。細胞主要向著分化生長。人成肌細胞的生長分 3 期，培養后 4~6 d 增殖達髙峰；8 d 左右排列成行；10~12 d 細胞融合和形成肌管增多。然而，必須記住一些細胞可能分化較早，絕大多數細胞分化時一些細胞仍處于增殖狀態。
三、傳代培養
17. 將少量 EDTA 輕輕注在細胞上面后立即吸去。
18. 加入 0.25 % 胰蛋白酶液，足以在細胞上面形成一薄層。
19. 當細胞去附著時，加入 5~10 ml 完全生長培養液，用吸管很輕微地吹打細胞，然后離心（350 g，10 min）。
20. 計數細胞，按一定密度種植細胞。 展開 |
|---|
| 注意事項 | 在扔入垃圾前，應該用次氯酸鹽處理剩余組織和使用過的試管、吸管、培養皿等。 |
|---|
