蛋白質印跡免疫分析的過程包括蛋白質經凝膠電泳分離后，在電場作用下將凝膠上的蛋白質條帶轉移到硝酸纖維素膜上，經封閉后再用抗待檢蛋白質的抗體 作為探針與之結合，經洗滌后，再將濾膜與二級試劑-放射性標記的或辣根過氧化物酶或堿性磷酸酶 偶聯抗免疫球蛋白抗體 結合，進一步洗滌后，通過放射自顯影或原位酶反應來確定抗原-抗體-抗抗體復合物在濾膜上的位置和豐度。
【蛋白質印跡實驗所需試劑】
1.IgG 標準品
2.羊抗人辣根過氧化物酶（HRP）標記的IgG 抗體
3.轉移buffer:Tris 3.03g,Gly14.4g,甲醇200ml,加三蒸水至 1000ml充分溶解，4℃冰箱貯存。
4.Tris buffer（TBS）：Tris 2.42g,NaCl 29.2g,溶于600ml三蒸水，再用1N HCl調至pH7.5,然后補加三蒸水至1000ml.
5.漂洗液（TTBS）：TBS液500ml,加 Tween20 250ul.
6.封閉液：5%脫脂奶粉。
7.抗體buffer:1.5g BSA溶于50ml TTBS.
8.顯色液DAB（3.3-diaminobenzidine,3.3-二氨基聯苯胺）配制：5mg DAB溶于10ml 檸檬酸buffer（0.01mol/L 檸檬酸2.6ml,0.02 mol/L Na2HPO4 17.39ml），加30% H2O2 10
μl（臨用時現配）。
9.脫色液：甲醇250ml,冰醋酸100ml,加蒸餾 水至1000ml.
10.氨基黑染色液（0.1%氨基黑 -10B）：0.2g 氨基黑-10B 溶于200ml 脫色液中，充分攪拌溶解，濾紙 過濾。
【蛋白質印跡實驗操作步驟】
一、樣品的SDS -聚丙烯酰胺凝膠電泳
按實驗四操作步驟進行。加樣時，注意在同一塊膠上按順序做一份重復點樣，以備電泳結束時，一份用于免疫鑒定，一份用于蛋白染色顯帶，以利相互對比，分析實驗結果。
二、轉移印跡
1.轉移前準備：將濾紙，硝酸纖維素膜（NC）剪成與膠同樣大小，NC膜浸入蒸餾 水中 10-20min 后浸入轉移buffer中平衡30min .
2.凝膠平衡：將電泳后的SDS -PAGE膠板置于轉移buffer 中平衡 30-60min.
3.按圖操作：逐層鋪平，各層之間勿留有氣泡和皺折。
4.開始轉移，連接正負極，蓋好蓋子，接上電源，恒流 0.8mA/cm,室溫下轉移1h,轉移后的凝膠再用氨基黑10B染色液染色20min ,然后脫色檢測轉移效果。
三、免疫染色
1.轉移后的NC膜于5%脫脂奶粉中封閉，4℃過夜。
2.TBS洗膜1-2次，10min/次。
3.加HRP標記的抗體，室溫1h .
4.TBS 洗3次，10min/次。
5.NC膜再轉入DAB顯色液中，置暗處反應，待顯色反應達到最佳程度時，立即用三蒸水洗滌終止反應。