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  • 發布時間:2020-04-06 17:20 原文鏈接: 做人外周血流式相關問題

    在下最近作人外周血流式,作表面及其胞內染色,試劑說明書說要先分離外周血單個核細胞再染色,我有時候分的紅細胞比較多,其他的方法試過了,都改進的不好,我擔心紅細胞會有影響,想在分離出PBMC以后如果紅細胞比較多的話,就用紅細胞裂解液裂解一下,但是我有如下問題,希望這樣做過的同志指點一下,感激不禁。

    (1)有人這樣在分離PBMC以后再裂解的嗎(我知道一般是在全血染色后再裂解紅細胞)?

    (2)這樣會影響流式檢測嗎?

    (3)用的裂解液配方是什么(最好是自己用過的)。

    (4)用法是什么{我是在如果PBMC分出來以后要是紅細胞比較多的時候使用,這樣要怎樣把分出的PBMC稀釋,加多少裂解液 裂解多長時間,裂解后洗滌幾次等等}。

    我曾做骨髓液分離單個核細胞而后做流式,一般來說用Ficoll分過之后即便還有紅細胞殘留,上流式也可通過“設門”根據細胞形態大小將紅細胞剔除。若紅細胞殘留太多,則可通過紅細胞裂解液進一步去除之。我用的裂解液配方是:

    碳酸氫鉀(KHCO3) 1.0g

    氯化氨(NH4CL) 8.3g

    EDTA-Na2 0.037g 加雙H2O至1000ml,為工作液。

    配好后4度冰箱保存,使用時效果更好。我是在Ficoll分過之后用的,所以一般根據離心后EP管里細胞團的大小加紅細胞裂解液,通常5ml骨髓液分離單個核細胞后得到的細胞再加500ul裂解液,震蕩混勻置2-5分鐘紅細胞就基本上裂解干凈了。洗滌次數看白細胞多少而定,因為洗的次數越多,損失就越多。我一般洗一到兩次就OK了。做了很久沒發現這樣處理影響結果。有一點,我是在這樣處理后才標記抗體的,樓上的說是標記過才溶紅細胞,所以建議在溶的時候時間不宜過長,洗滌次數也不宜過多,以免將標記上的單抗洗脫。

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