四 結果分析
| 編號 | 陽性片 | 待檢片 | 陰性對照 | 結論 |
| 1 | - | - | - | 操作錯誤,抗體失效 |
| 2 | + | + | + | 非特異性著色 |
| 3 | - | + | - | 陽性片不含靶抗原 |
| 4 | + | - | - | 待檢片不含定位抗原 |
| 5 | + | + | - | 待檢片含定位抗原 |
染色結果的判斷除了上述之外,還可以從以下方面加以判斷:
(1) 陽性反應與非特異性著色區別:陽性反應分布總是有規律性的,局限定位某一部位而非特異性著色則無規律性,無界限,定位不準確,且不能重復,結締組織受染和內源性產物干擾是最多見的非特異性著色。
(2) 人為造成非特異性反應如切片折疊,刀痕,以及組織處理過程中出現的色素,沉淀物以及組織細胞壞死等都可以出現非特異性反應。
(3) 有的抗原被吞噬細胞吞噬,或停留某一部位,這些都影響抗原的正確定位。
(4) 如陽性對照和待檢片都呈陰性反應,檢查操作中是否顛倒了抗體順序或漏加某一抗體;組織在處理中抗原被破壞;某一抗體失效;顯色試劑如DAB配制時漏加H2O2等。
(5) 陽性和待測片均呈弱陽性,抗體稀釋度過大;切片殘留緩沖液過多;孵育時間過短,抗體放置過久效價下降等。
(6) 所有切片過度著色,多見于顯色液中H2O2過多,顯色過長,切片粘合劑使用不當,切片過厚,抗體稀釋不夠,或沒有用非免疫血清處理切片等。
五 常用液體的配制:
10.01mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS) PH7.2
NaH2PO4 儲備液(A) 19ml
NaHPO4 儲備液(B) 81ml
Nacl 17g
加雙蒸水至 2000ml
注:A液 0.02M NaH2PO4.2H2O 31.2g 加蒸餾水1000ml
B液 0.02M NaHPO4.2H2O71.6g加蒸餾水1000ml
20.05mol/L TBSPH7.6
0.2mol/LTris 250ml
0.1mol/L Hcl 400ml
Nacl 8.5g
蒸餾水加至 1000ml
2 0.05mol/L枸櫞酸緩沖液 PH5.5-6.0
醋酸胺儲備液 99.0ml
枸櫞酸儲備液 1.0ml
注:儲備液配制: 醋酸胺1.93g 加蒸餾水500ml
枸櫞酸1.05g 加蒸餾水100ml
3 3,3′--二氨基聯苯胺(DAB)顯色液
DAB 5mg
0.05mol/L PH 7.6 TBS 10ml
30% H2O2 μl5
將5mgDAB溶解于10ml0.05mol/L PH 7.6 TBS中,充分攪拌,使之溶解后,用雙層濾紙過濾,用前加 30% H2O2 5μl。顯色陽性結果為棕褐色。
4 3-氨基-9-乙基咔唑(AEC)顯色液
AEC 4mg
二甲酰胺(DMF) 1ml
0.05mol/L PH5.2 醋酸緩沖液14ml
30% H2O2 μl15
先將AEC溶解于DMF中,再加入醋酸緩沖液,充分 混勻,用前加30% H2O2。顯色陽性結果為紅色。
5 3%過氧化氫(H2O2)
90ml的蒸餾水或甲醇中加入10ml的30% H2O2 即可。用于封閉內源性過氧化物酶。
6 0.4%胃蛋白酶(Pepsin)
胃蛋白酶400mg溶于100ml的0.1NHCL中即可。消化時間37℃、10-30min。主要用于細胞間質抗原的免疫組化。
7 0.1%胰蛋白酶(Trypsine)
胰蛋白酶 0.1g
0.1%氯化鈣100ml
濃Hcl 7ml
首先配制0.1%的CaCl2, 用0.01mol/L的NaOH將其PH值調至7.8,然后加入胰蛋白酶溶解,必要時可過濾。消化時間37℃、5-30min。主要用于細胞內抗原的暴露。
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