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  • 發布時間:2020-08-25 12:15 原文鏈接: 關于CRISPRCAS9介導的基因編輯細胞株的一些經驗總結

      最近小編在應用CRISPR/CAS9作為工具制備基因編輯細胞株,有一些階段性總結和設想,在這里貼出來,大家可以互相探討一下。

      首先要描述一下“基因編輯細胞株”的具體要求:

      (1)“基因編輯”是指在特定位點引入期望的堿基修飾。

      具體過程為,通過CRISPR/CAS9在待編輯位點(靶位點)附近引入基因組DNA雙鏈斷裂(DSB)后,通過同源重組介導的修復(Homology Directed Repair,HDR)引入期望的序列改變。

      (2)無痕編輯。

      即在得到的基因編輯細胞株中,除待編輯位點外,細胞株基因組不發生變化。

      (3)純合子。

      即對于得到的細胞株中,所有單個細胞對于所包含的幾套染色體(對于腫瘤細胞,多數情況為異倍體),靶位點均發生特定堿基修飾。

      目前為止小編只想到3條(其實這3條就足以讓人眉頭緊蹙了),歡迎在留言區補充!

      下面,小編分幾個方面羅列目前的一些總結或設想,權作拋磚引玉,繼續歡迎大家在留言區輕拍討論。

      第一方面:同源模板

      1)不采用ssODN(single-stranded donor oligonucleotides)。

      有一原則,即要引入的突變序列越長,需要的同源臂越長。

      原本ssODN對于點突變等小范圍修改是非常便利,但小編還是準備忍痛割愛。

      因為效率低(得到突變純合子的平均中位值約2%),且ssODN難以引入篩選標簽,只能通過PCR的方法盲篩。對于轉染效率低的細胞,采用ssODN往往事倍功半。

      2)使用Donor質粒,且需要有陽性和陰性篩選Marker

      ● Donor質粒結構如下:

      陽性篩選Marker:加藥后,含有此基因的細胞存活。

      陰性篩選Marker:加藥后,含有此基因的細胞凋亡。

      ● CAS9切割基因組產生DSB后,Donor質粒介導基因組的插入:

      此時加入陽性篩選藥物,去除未發生HDR的細胞。

      ●之后轉染表達轉座酶的質粒,圖中綠色PB及中間序列被無痕切除,修飾完成:

      此時加入陰性篩選藥物,去除無痕切除不成功的細胞。

      在此基礎上,再通過PCR的方法篩選純合子,效率可以提高至25%左右。

      3)適當延長donor質粒左右臂長度

      突變片段越大,需要的左右臂長度越大,一般在600到2000之間。

      4)防止CAS9二次切割

      在donor質粒上,需要將對應sgRNA的PAM或鄰近PAM的序列進行同義突變,以防止donor質粒插入基因組前后被CAS9識別并切割。

      5)擴增左右臂的模板選擇要慎重

      左右臂需要以待突變的目的細胞基因組為模板擴增,避免不同細胞基因組差異導致左右臂不同源,降低HDR效率。

      6)質粒構建難度大

      構建donor質粒需要線性化質粒、左臂、插入片段、右臂4段片段連接,建議采用Gibson法。

      7)質粒質量要求高

      質粒純化后濃度需要高于1ug/ul。

      第二方面:CRISPR/CAS9切割

      1)避免脫靶

      sgRNA設計避免脫靶。

      采用nick形式的CAS9加雙sgRNA,實際切割效率不低,且避免脫靶。

      2)sgRNA貼近編輯位點

      CAS9切割位置在待修飾位點的30bp以內,最差保持在50bp以內。

      3)保證sgRNA活性

      sgRNA活性是影響KI的關鍵因素之一,因此需要提前驗證其活性。

      4)CAS9形式選擇

      縮短CAS9蛋白在細胞內的存續時間,可以避免連續切割和脫靶,建議使用mRNA或蛋白形式的CAS9。若采用質粒,需要確保其純度和濃度(建議大于1μg/μl)。

      第三方面:對細胞的要求

      1)細胞需保真

      制備一株基因編輯細胞株所需要的時間、人力和金錢成本都是較高的,前提是細胞必須STR驗證通過。

      2)提前確定靶位點序列

      所有操作前,對待修飾的細胞需要提前測序了解靶位點的序列。

      3)預實驗確定細胞特性

      需要提前確定細胞最優轉染方式、單克隆形成能力及篩選藥物的最適濃度。

      此文寫罷,才疏學淺,心下惴惴,盼在留言區見各位高論!

      文獻參考

      1. PMID: 27709569.CRISPR/Cas9-Mediated Mutagenesis of Human Pluripotent Stem Cells in Defined Xeno-Free E8 Medium.

      2. PMID: 26748756. Genome Editing in Human Pluripotent Stem Cells: Approaches, Pitfalls, and Solutions.

      3. PMID: 27532820. Comprehensive Protocols for CRISPR/Cas9-based Gene Editing in Human Pluripotent Stem Cells.

      4. PMID: 22189101Concerted nicking of donor and chromosomal acceptor DNA promotes homology-directed gene targeting in human cells.


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