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  • 發布時間:2019-05-20 19:15 原文鏈接: 分子生物學產品常見問題分析

    分子生物學產品常見問題分析

    問題原因解決辦法DNA完全沒有被內切酶切割1) 內切酶失活標準底物檢測酶活性2) DNA不純,含有SDS,酚,EDTA等內切酶抑制因子將DNA過柱純化,乙醇沉淀DNA3) 條件不適(試劑、溫度)檢查反應系統是否最佳4) DNA酶切位點上的堿基被甲基化換用對DNA甲基化不敏感的同裂酶酶解,重新將質粒DNA轉化至dcm-,dam-基因型的細菌菌株5) DNA酶切位點上沒有甲基化(如Dpn I)換用不同切割非甲基化位點的同裂酶消化DNA(如San3A I代替Dpn I),重新將質粒轉至dcm+ dam+菌株中擴增6) DNA位點上存在其它修飾將DNA底物與λDAN混勻進行切割驗證7) DNA不存在該酶識別順序換用其它的酶切割DNA或過量酶消化進行驗證DNA切割不完全1) 內切酶活性下降用5-10倍量過量消化2) 內切酶稀釋不正確用酶貯藏液或反應緩沖液稀釋酶3) DNA不純,反應條件不佳同上4) 內切酶識別的DNA位點上的堿基被甲基化或存在其它修飾同上5) 部分DNA溶液粘在管壁上反應前離心數秒6) 內切酶溶液粘度大,取樣不準將內切酶稀釋,增大取樣體積7) 酶切后DNA粘末端退火電泳前將樣品置65℃保溫5-10分鐘,取出后置冰浴驟冷8) 由于反應溶液、溫度、強烈振蕩使內切酶變性使用標準反應緩沖液及溫度,避免強烈振蕩9) 過度稀釋使酶活性降低適當稀釋酶液,反應液稀釋的酶不能貯藏10)反應條件不適使用最佳反應體系11)識別位點兩側插入了可影響酶切效率的核酸順序加大酶量5-10倍DNA片段數目多于理倫值1) 內切酶星狀活性檢查反應條件:甘油濃度大于12%,鹽度過低,Mn2+的存在及酶:DNA值過大均均可導致星狀活性,降低酶的用量2) 其它內切酶污染用λDNA作底物檢查酶切結果3) 底物中含其它DNA雜質電泳檢查DNA,換用其它酶切,純化DNA片段酶切后沒有觀察到DNA片段的存在1) DNA定量錯誤(如RNA含量較高)用RNA酶A(無DNA酶)100ug/ml消化DNA樣,酚抽提后沉淀溶解,定量2) 在酶切反應液中形成非特異的沉淀在反應前透析DNA樣品或用酒精沉淀二次內切酶保存期內快速失活1) 保存溫度不合適內切酶貯藏在含50%甘油的貯藏液中,應在-20℃低溫保存2) 以稀釋形式保存稀釋酶液不宜長期存放,應一次使用3) 貯藏緩沖液不適當使用廠家推薦的貯藏緩沖液4) 低蛋白濃度內切酶與500ug/ml的BSA一起保存電泳后DNA片段的帶型彌散,不均一1) DNA上結合有蛋白質電泳前上樣液65℃加熱5min,并加入0.1%的SDS,酚/氯仿抽提純化2) 內切酶中含有DNA外切酶減少酶用量或消化時間,換用新包裝的酶酶切后的DNA片段連接效率低1) 含磷酸鹽的濃度高透析,乙醇沉淀去除磷酸鹽2) 內切酶失活不全或含有ATP酶延長滅活時間或用酚抽提,乙醇沉淀回收DNA3) 平末端連接加大T4 DNA Ligase用量4) 外切酶污染減少酶用量,縮短保溫時間,酚抽提回收DNA5) 連接緩沖液不合適重新配制連接緩沖液

    三、DNA分子量標準問題分析:

    問題原因解決辦法帶弱或無DNA帶1) 上樣DNA的量不夠增加DNA的上樣量,聚丙烯酰胺凝膠電泳比瓊脂糖電泳靈敏度稍高2) DNA降解避免DNA的核酸酶污染3) DNA走出凝膠減短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度4) 對于EB染色的DNA,所用紫外光源不合適應用短波長(254nm),紫外燈增強靈敏度DNA帶缺失1) 小DNA帶走出凝膠減短電泳時間,降低電壓,增強凝膠濃度2) 分子大小相近的DNA帶不易分辨增加電泳時間,核準正確的凝膠濃度3) DNA 變性電泳前請勿高溫加熱DNA鏈,以20mM NaCl Buffer稀釋DNA4) 巨大DNA鏈,凝膠電泳不合適在脈沖電聲凝膠電泳上分析DNA帶模糊1) DNA降解避免核酸酶污染2) DNA上樣量過多減少凝膠中DNA上樣量3) 所用電泳條件不合適電泳時電壓不應超過20V/cm,溫度<30℃,巨大DNA鏈,溫度應<15℃,核查所用電泳緩沖液是否有足夠的緩沖能力4) DNA樣含鹽過高電泳前通過乙醇沉淀去除過多的鹽5) 有蛋白污染電泳前酚抽提去除蛋白6) DNA變性電泳前勿加熱,用20mM NaCl緩沖液稀釋DNA不規則DNA帶遷移1) 對于λ/Hind III片段COS位點復性電泳前加熱DNA 65℃加熱5-10分鐘,然后在冰上冷卻5分鐘2) 電泳條件不合適電泳電壓不超過20V/cm,溫度<30℃,電泳緩沖液有足夠的緩沖能力3) DNA變性以20mM NaCl Buffer稀釋DNA,電泳前勿加熱

       以λ/Hind III為代表的λDNA酶切片段用作電泳分析中的分子量標準,會發現電泳后分子量條帶不對的問題,解釋原因如下:在Lambda DNA分子的左右臂存在著12個堿基組成的具有互補順序的單鏈突出端-COS位點,COS位點的退火復性,在λDNA片段電泳分離時會出現問題,含左右臂片段在膠上應出現的地方條帶會減弱或完全看不到,而復性的左右臂片段會結合成大的片段,即在較大的分子量區域內產生一個額外的條帶,這就造成了不正常的帶型。解決以上問題的辦法,是在電泳之前,把DNA分子量標準67℃加熱約10分鐘,然后立即放入冰浴中驟冷,待樣品冷卻后上樣。這樣即可解離復性的粘性末端,使電泳過程DNA片段形成正常的帶型分布。

    四、凝膠電泳操作注意事項: 

        1. 緩沖系統:在沒有離子存在時,電導率最小,DNA不遷移,或遷移極慢,在高離子強度的緩沖液中,電導很高并產熱,可能導致DNA變性,因此應注意緩沖液的使用是否正確。長時間高壓電泳時,常更新緩沖液或在兩槽間進行緩沖液的循環是可取的。
        2. 瓊脂糖:不同廠家、不同批號的瓊脂糖,其雜質含量不同,影響DNA的遷移及熒光背景的強度,應有選擇地使用。
        3. 凝膠的制備:凝膠中所加緩沖液應與電泳槽中的相一致,溶解的凝膠應及時倒入板中,避免倒入前凝固結塊。倒入板中的凝膠應避免出現氣泡,影響電泳結果。
        4. 樣品加入量:一般情況下,0.5cm寬的梳子可加0.5ug的DNA量,加樣量的多少依據加樣孔的大小及DNA中片段的數量和大小而定,過多的量會造成加樣孔超載,從而導致拖尾和彌散,對于較大的DNA此現象更明顯。
        5. 電泳系統的變化會影響DNA的遷移,加入DNA標準參照物進行判定是必要的。
        6. DNA樣品中鹽濃度會影響DNA的遷移率,平行對照樣品應使用同樣的緩沖條件以消除這種影響。
        7. DNA遷移率取決于瓊脂糖凝膠的濃度,遷移分子的形狀及大小。采用不同濃度的凝膠有可能分辨范圍廣泛的DNA分子,制備瓊脂糖凝膠可根據DNA分子的范圍來決定凝膠的濃度。小片段的DNA電泳應采用聚丙烯酰胺凝膠電泳以提高分辨率。 


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