(1)DAN斑點雜交
①先將膜在水中浸濕,再放到15×SSC中。
②將DNA樣品溶于水或TE,煮沸5min,冰中速冷。
③用鉛筆在濾膜上標好位置,將DNA點樣于膜上。每個樣品一般點50μl(2~10μg DNA)。
④將膜烘干,密封保存備用。
(2)RNA斑點雜交:與上法類似,每個樣品至多加10μg總RNA(經酚/氯仿或異硫氰酸胍提取純化)。方法是將RNA溶于5μlDEPC水,加
15μl甲醛/SSC緩沖液(10×SSC中含0.15mol/l 甲醛)使RNA變性。然后取5~8μl點樣于處理好的濾膜上,烘干。
培養細胞,標本處理技術可以簡化,不用提取和純化RNA。方法是用含0.5%Nonidet
P40的低滲緩沖液對多種動物細胞作簡單處理,離心去掉細胞核和細胞碎片,就得到基本不帶DNA而富含RNA的細胞質提取物,這一粗RNA在高鹽下用甲醛變性,不需加工直接點到硝酸纖維素膜上。本法可以快速檢測大量標本,而只需極少量的細胞(5×104)或組織。
整個RNA實驗中,要防止激活內源性RNase,有許多種預防措施,有一種是在樣品中加入核糖核苷氧礬基復合物(RVC)。
(3)完整細胞斑點雜交:應用類似檢測細菌菌落的方法,可以對細胞培養物的特異序列進行快速檢測。將整個細胞點到膜上,經NaOH處理,使DNA暴露、變性和固定,再按常規方法進行雜交與檢測。有人曾用此法從105個培養細胞中檢測到少至5pg
的Epstein –
Barr病毒DNA。完整細胞斑點印跡法可以用于篩選大量標本,因為它是使細胞直接在膜上溶解,所以DNA含量甚至比常用的提取法還高,又不影響與32P
標記的探針雜交。但它不適于非放射性標記探針,因為DNA純度不夠,會產生高本底。
3.Southern印跡雜交(southern blot ) Southern blot
是研究DNA圖譜的基本技術,在遺傳診斷DNA圖譜分析及PCR產物分析等方面有重要價值。Southern印跡雜交基本方法是將DNA標本用限制性內切酶消化后,經瓊脂糖凝膠電泳分離各酶解片段,然后經堿變性,Tris緩沖液中和,高鹽下通過毛吸作用將DNA從凝膠中轉印至硝酸纖維素濾膜上,烘干固定后即可用于雜交。凝膠中DNA片段的相對位置在DNA片段轉移到濾膜的過程中繼續保持著。附著在濾膜上的DNA與32P標記的探針雜交,利用放射自顯影術確定探針互補的每條DNA帶的位置,從而可以確定在眾多酶解產物中含某一特定序列的DNA片段的位置和大小。
(1)瓊脂糖凝膠電泳:利用瓊脂糖凝膠電泳可以很容易地將DNA限制酶消化片段(0.3~25kb)分離開。分離大分子DNA片段(800~12000bp)用低濃度瓊脂糖(0.7%),分離小分子片段(500~1000bp)用高濃度瓊脂糖(1.0%),300~5000bp的片段則用1.3%的瓊脂糖凝膠,根據分離樣品量、分離速度和分辨率要求的不同,可選用不同規格的電泳槽。
電泳時,同時將標記物加到旁邊孔中,便于確定樣品DNA的分子量。20伏恒壓電泳過夜。電泳畢,將膠浸到含0.5μg/ml
EB的TBE緩沖液中染色30min,也可將EB直接加到電泳緩沖液中或在配膠前加入膠中,在254nm短波透射燈下拍照,加橙黃色濾色鏡,使用高速一次成像膠片,光圈f4.5,曝光20~40s。
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