實驗概要
腺病毒載體，廣泛用于外源基因轉移到神經膠質細胞，具有細胞毒性。利用腺病毒載體轉染神經細胞已經盛行，因為腺病毒載體除了感染細胞后有限的細胞毒性，還利于長期表達轉基因。
主要試劑
人類胚胎腎（HEK）293T細胞
腺病毒轉移載體質粒
腺病毒包裝載體PLP1，pLP2（之前），PLP / VSVG
DMEM培養基
青霉素，鏈霉素-谷氨酰胺（100X）
磷酸鹽緩沖液PBS（-）
胎牛血清
凝聚胺
主要設備
10-cm的細胞培養皿
50毫升錐形離心管
Steriflip-GP過濾器（0.22微米）
超離心管17.0mL
5％二氧化碳培養箱
熒光顯微鏡
生物安全柜
離心機
實驗材料
2.5M氯化鈣溶液：36.75克氯化鈣，70毫升雙蒸H 2 O，通過0.22μm濾膜過濾，體積調制100毫升
2X HEPES緩沖：氯化鈉280 mM，50mM肝素鈉，1.5mM的Na2HPO4 (pH值7.05）
實驗步驟
腺病毒載體的構建和濃度
第1天： HEK細胞的培養
1．收集預融合的HEK 293T細胞，細胞培養于完全DMEM培養基中（含10％FBS，50 U/ml的青霉素G和50μg/mL鏈霉素的，pH值7.35）。
2．將收集的濃度為1×106 的HEK 293T細胞接種于直徑250px的培養皿中，加入10mL完全DMEM培養基。漩渦震蕩使細胞均勻分布， 37℃培養24h。
第2天：轉染
3．觀察第1天培養的細胞，細胞應鋪滿約60％。
注意：細胞長滿80％會導致收獲病毒時PH偏低。
4．更換DMEM培養基（10％FBS，10mL），繼續孵育于CO 2培養箱30min。
5．將10μg腺病毒轉移載體與10μg包裝混合物混合，用無菌ddH2O稀釋質粒至總體積450μL。
6．向質粒中加入50μL 2.5 M氯化鈣混勻，然后加入500μl 2xHEPES緩沖液，渦旋。
7．將所有的轉染混合物加入（散開）培養板，輕輕震蕩，繼續培養于5％CO2培養箱過夜（16h）。
第3天：觀察細胞和更換培養基
8．觀察細胞
注意：細胞不能達到飽和狀態，應該有供細胞分裂生長的空間，因為細胞鋪滿后培養基的pH值會迅速下降。
9．吸出培養基，加入5mL預熱的PBS（-）洗兩次細胞，然后加入9.5mL新鮮培養液的DMEM培養基， 5％CO 2培養箱繼續培育，37℃過夜。
第4天：收獲細胞和濃縮病毒顆粒
10．轉染40h后收集上清液。
注意：收集時培養基顏色應該是紅色的（酚紅的顏色），（pH值7.20或更高）在這個pH值內病毒培養較好，因此，不要使用從第二次收獲的細胞。為了獲得優先轉染膠質細胞的腺病毒載體，應使用病毒轉染后2d或3d的細胞。此外，最好使用充足胎牛血清培養的細胞。
11．通過0.22微米的過濾器過濾，清除上清液中的細胞碎片。
12．超速離心濃縮病毒顆粒。4℃，用吊桶式轉頭離心上清120000xg，1.5h。將2個培養板（約18mL）的上清濃縮于一管。
13．倒掉上清液，沉淀幾乎看不見。
14．用90μL PBS（-）重懸病毒顆粒。病毒懸浮液，可用于在體外和體內實驗：但是，如果需要純凈級的質量，可通過如下步驟純化病毒。
腺病毒載體滴度的測定
腺病毒載體的滴度通過HeLa細胞的轉染來測定。雖然滴度可以在13步后就可以計算，但為了縮短整個過程我們通常從第3天開始計算。
第3天：HeLa細胞播種
15．將 1×105的的HeLa細胞接種于含1mLDMEM培養基（10％FBS）的12孔板，添加聚凝胺至濃度為6 μg/ml。在5％CO2培養箱孵育，37℃過夜。
第4天：腺病毒載體的感染HeLa細胞
16．用PBS 10倍梯度稀釋的病毒（稀釋從10 -3到10 -6）。實際測試的范圍將取決于病毒制劑的濃度。17．將每個梯度稀釋的病毒加入單層生長的HeLa細胞，輕輕搖勻， 337℃培養。
第5-8天：腺病毒載體的滴度測定
18．細胞再生長3天（感染后總88h），綠色熒光蛋白染色后48h可見。然而，這個時間根據滴定用腺病毒載體和細胞株不同而有所不同。
19．檢測標記細胞百分比：如果標記是綠色熒光蛋白，計數綠色熒光蛋白表達的細胞。
20．如前所述計算生物滴度（TU/ml，轉染單位）。