多肽的固相合成、切割及純化（二）

（五）合成結束后處理

小心卸一柱子，倒出肽合成樹脂。若切割時，可按切割程序進入，否則將合成肽樹脂冷凍干燥后保存。
 

（六）合成過程的檢測報告

1,，資源報告；

2，脫保護圖譜；

3，合成過程UV檢測圖譜

  a，脫N端的Fmoc紫外吸收；

  b，去Fmoc，洗柱紫外吸收；

  c，溶解待合成接上去氨基酸的紫外吸收；

  d，偶聯氨基酸到柱子上；

  e，洗探針的紫外吸收；

  f，如果使用延時合成時對檢測器沖洗的紫外吸收；

  g，洗滌柱子的紫外吸收。

二、合成肽的切割

切割（Cleavage）屬于肽合成的后處理部分，是指將已合成的肽從載體（樹脂）上切割下來。有人認為也包括脫去側鏈保護。切割及去保護是合成中最重要步驟。如果試劑和反應條件選擇不當，產物會發生不可逆的修飾而被破壞，因此在切割時應注意以下幾個問題：1、選擇合適的切割及脫保護試劑，根據合成肽氨基酸的不同而選擇；2、選擇合適的試劑濃度、反應時間、溫度等條件；3、氨基酸側鏈的保護，在切割時，切割試劑或切割產物可能對一些對其敏感氨基酸側鏈造成破壞或修飾，因此，反應時要選擇合適試劑和條件，必要時，對敏感側鏈進行保護，使其遭到最小程度的破壞。

（一）切割試劑及條件

試劑配方：TFA/phenyl/water/TIPS=88/5/5/2

條件：
用量   0.5g介質/5ml TFA液

溫度   冰浴中

時間   2h
 

（二）切割操作流程
 

（三）切割檢測

1，茚三酮定性反應，檢測介質上huBPP切割是否完全

取4支試管，分別加入①未切割介質；②合成前介質；③已切割介質；④甘氨酸少許，分別加入0.5ml-1ml酸水（<pH3），再加入少許茚三酮，水浴加熱，觀察顏色變化。氨基酸與茚三酮反應呈紫色。

2，HPLC法：檢測切割后肽的純度

HPLC條件：

儀器：Beckman gold system

色譜柱：DiamonsilTM  C18 5μl，250×4.6mm，迪馬公司產品

流動相：A: 0.1% TFA

                B: 0.1% TFA-CH3CN

洗脫梯度：B: 0~100%  20min

流速：1ml/min

檢測波長：245nm

樣品準備：取切割后水相液體過0.45μl水性膜，取20μl上樣。

結果分析：觀察與對照品的保留時間，峰面積百分比等參數。

三、合成肽的純化

在肽的合成和切割中會產生一不完全肽、反應副產物、殘留試劑等，有必要對肽進行純化。

有關肽的純化和蛋白質純化、鑒定有許多相似之處，如均可用色譜純化，但也在它的特殊性，如分子量太小，不易透析除鹽，一般不易用常規SDS-PAGE鑒定等，所以，它的純化、鑒定應根據肽的特性來設計。HuBPP水溶性好，可以用離子交換色譜如Q-Sepharose FF純化，平衡液pH選在7.0即可。也可以用反相柱純化。下面介紹huBPP的反相純化方法。

（一）儀器及試劑

儀器：Waters 650半制備色譜儀

色譜柱 Prep Park 25×10 Cartridge

內柱：Delta-PakTM  C18  100A 15μ

乙腈

（二）純化過程

樣品準備

將切割后水相離心，或過濾除雜，備用

平衡柱子，用H2O平衡柱子，流速3ml/min，到基線平穩

上樣，注入5ml樣品

洗脫：B液：0~60%  30min

分部收集洗脫峰
 

（三）鑒定

純度鑒定：將各峰分別上HPLC反相柱分析，條件見高效液相色譜實驗中反相色譜部分。

含量測定及計算收率：用Lorry's 法測定切割、純化各步驟中的肽含量度計算收率。