1、培養用液：
HBSS。含有10mmol/L Hepes 的無鈣、鎂離子的PBS（ph7.4）。
酶消化液。用HBSS配制，含0.025%胰蛋白酶和1mg/ml III型的膠原酶。
細胞分散液。含有1mg/ml BSA、10mmol/L hepes、50U/ml青霉素和50/ml鏈霉素、25ug/mlDNA酶1的L15培養基。
生長培養基。為低糖DMEM培養基，含有15%雞胚浸出液、20ng/ml重組人bFGF、1%N2添加劑、2%B27添加劑、50umol/L2-巰基乙醇、35mg/ml維甲酸、50U/ml青霉素和50ug/ml鏈霉素。
多聚D-賴氨酸溶液。先用培養用水配置成10mg/ml的儲存液，-20℃保存。
使用時用硼酸鹽緩沖液稀釋成10ug/ml的濃度。
易生物試劑庫：
2、細胞的分離和培養步驟：
孕期14-17天SD大鼠，用戊巴比妥(65mg/kg)腹膜下注射麻醉，腹部用75%乙醇消毒后，打開腹腔，取出子宮，小心的剪開子宮取出胎鼠。
將胎鼠脫頸處死后，在解剖顯微鏡下獲取坐骨神經，置于預冷的HBSS中。
用1ml酶消化液在37℃條件下酶解4min，然后加入2倍體積的細胞分散液終止酶解反應。
經1000r/min離心5min后，棄去上清，沉淀細胞中加入細胞分散液，用吸管吹打分散，制成單細胞懸液。
為了獲得神經嵴干細胞，將分離的坐骨神經細胞懸浮于1：2000稀釋的P0單克隆的抗體（P07）中，置冰浴20-25min，經離心漂洗后，再與藻紅蛋白偶聯的抗小鼠IgG1二抗反應。細胞經離心漂洗后，再與偶聯熒光素的抗P75IgG抗體（192）反應，細胞經漂洗后，用含有2ug/ml7-氨基放線菌素D（7-AAD）的培養基進行活細胞染色。
采用流式細胞儀分選出P75+/P0-的細胞。
細胞接種于用多聚D-賴氨酸和0.15mg/ml人纖黏連蛋白包被的6孔培養板，加入生長培養基2ml，置37℃含6%CO2及飽和濕度的培養箱中培養。
在上述培養系統中，分離的細胞在4天之后經特異免疫染色，可見有外周神經元、施萬細胞和平滑肌樣的肌纖維母細胞。P75+的細胞具有多向分化的潛能，但若p0蛋白表達也為陽性的細胞則多向分化的能力降低，而p75-/p0+的細胞則只能分化成施萬細胞和肌纖維母細胞，p75-/p0-的細胞只能分化成肌纖維母細胞。因此要從坐骨神經獲得神經嵴干細胞必須分選p75+的細胞。在培養時使用16nmol/L BMP2，能加速神經元的分化并增加神經元的比例。若使用1nmol/L膠質細胞生長因子（NRG1），在培養14天后，95%以上細胞分化為施萬細胞，而未見有神經元的存在。而若使用TGF-β，細胞的存在能力欠佳，但存活的細胞中SMA陽性的肌纖維母細胞比例很高。