1). 將凍存管從液氮或冰箱中取出；
2). 不待細胞溶解，將Trizol500ul-1ml直接放入凍存管中，此時Trizol會凍成冰狀；
3). 將凍存管緩慢融化，并用加樣器吹打混勻；
4). 將細胞裂解液移至Eppendorf管中，16000′g離心1min，吸出管底絮狀沉淀;
注釋：該步驟并非必要，多數Protocol省略該步驟，但加入該步中能明顯提高RNA的質量；注意不能離心時間過長，否則沉淀難以吸出，將200ul黃槍頭尖部切去0.5cm操作；
5). 加入1/5體積的氯仿（約200ul）,上下顛倒2~3min；
6). 4℃ 16000′g離心15min，輕輕吸出上清至新的Eppendorf管（約700ul ），不要擾動中間層或用手指使Eppendorf管變溫；
注釋：一般情況下提取的RNA已經足夠，而且在逆轉錄過程中RNA的質量要遠較RNA的數量更重要，一般僅取上清的上1/2左右足矣，這樣可最大限度避免對于中間蛋白相的擾動；
7). 加入等體積異丙醇（約800ul）,充分混勻，冰上靜置15min；
8). 4℃ 16000′g離心15min，輕輕倒掉上清，僅留管底沉淀；
9). 加入1ml預冷的無水乙醇，4℃ 16000′g離心2min，輕輕倒掉上清，僅留管底沉淀；
10). 倒置Eppendorf管于干凈濾紙上，至可見乙醇完全揮發；
11). 用100ul 新鮮制備的DEPC處理過的MilliQ 水溶解RNA，如果溶解不好，-20℃反復凍融1~2次，4℃ 16000′g離心3min，將上清吸至新的Eppendorf管中；
12). 加入等體積12 M LiCl，-20℃靜置15min；
13). 4℃ 16000′g離心15min，輕輕倒掉上清，僅留管底沉淀；
注釋：該步驟的目的在于去除小分子降解RNA和鹽分；但可以省略；只有大分子RNA在高濃度LiCl中沉淀，DNA不會沉淀；
14). 加入1ml預冷的無水乙醇，4℃ 16000′g離心2min，輕輕倒掉上清，僅留管底沉淀；
注釋：該步的目的在于去除LiCl，LiCl溶于乙醇，而RNA不溶于乙醇，利用溶解度分離；
15). 倒置Eppendorf管于干凈濾紙上，至可見乙醇完全揮發RNA邊緣呈半透明；
16). 用40ul新鮮制備的DEPC處理過的MilliQ 水溶解RNA；
17). 取出5ul 用于紫外分光光度計測定和瓊脂糖凝膠電泳，其余凍存-70℃。
注釋：如果OD260/OD280＜1.8，則加入等體積Trizol，按上述步驟重新提純。