| 實驗方法原理 | 固定阻滯于分裂中期的細胞，在低滲液中膨脹，將細胞滴在載玻片上，染色，觀察 [ Rothfels and Siminovitch，1958；Rooney and Czepulkowski，1986 ] 。 |
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| 實驗材料 | D-PBS0.25%胰蛋白酶對數期的培養細胞秋水仙酰胺 |
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| 試劑、試劑盒 | 低滲溶液醋酸甲醇固定液Giemsa染液DPX或Permount封固劑冰 |
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| 儀器、耗材 | 離心管巴斯德吸管載玻片蓋玻片載玻片盒低速離心機渦流混懸器 |
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| 實驗步驟 | 1. 將 2× 104~ 5× 104 個細胞 /ml （4× 103~ 1× 104 個細胞 /cm2） 20 ml 在 75 cm2 的培養瓶中培養。
2. 約 3.5 天后，細胞處于對數生長期時，將 0.2 ml 的 1×10-5 mol/L 的秋水仙酰胺（用 D-PBSA 配制）加入培養瓶內已有的培養基中，終濃度 1×10-7 mol/L 。
3. 4~6 小時后，輕輕去掉培養基，加 5 ml 0.25% 胰蛋白酶，孵育 10 min。
4. 在胰蛋白酶液中離心細胞，棄掉上清胰蛋白酶。
5. 以 5 ml 低滲溶液（0.04 mol/L KCl ; 0.025 mol/L 枸櫞酸鈉）重新混懸細胞，37℃ 下靜置 20 min 。
6. 加入等量新鮮配制的冰冷的醋酸甲醇（一份冰醋酸加三份無水甲醇或乙醇，新鮮配置并在冰上保存），不停地混合，然后以 100 g 速度離心 2 min。
7. 棄掉上清混合物，在渦流混懸器上震蕩細胞團塊，再慢慢邊混勻邊加新制備的醋酸甲醇。
8. 細胞在冰上靜置 10 min。
9. 以 100 g 速度離心細胞 2 min 。
10. 棄掉上清醋酸甲醇，以 0.2 ml 的醋酸甲醇溶液，重新振蕩混懸細胞團，直到細胞均勻分散。
11. 用吸管吸一滴細胞懸液到吸管尖部，從約 12 英寸（30 cm） 處滴到涼的玻片上，傾斜玻片，讓液滴流下并鋪開。
12. 將玻片在燒杯沸水上迅速干燥，然后用相差顯微鏡觀察。如果細胞均勻鋪展而沒有相互接觸，則以同樣濃度的細胞制備更多片子。如果細胞成堆重疊出現，則稀釋懸液 2~4 倍之后，再制備一張滴液玻片。如果滿意，就制備更多片子，若不滿意，重復這一步驟進一步稀釋。
13. 進行 Giemsa 細胞染色：
(a)將玻片放在架子上，架子放在水池上。
(b)以數滴純 Giemsa 染液完全覆蓋玻片，染色 2 min 。
(c)以約 10 倍體積的水淹沒玻片。
(d)再靜置 2 min。
(e)用流動水沖掉稀釋過的染液。
(f) 最后用水逐張沖洗玻片去除染液沉淀。
(g)顯微鏡下觀察染色情況，如果滿意，則將載玻片徹底干燥，用#00蓋玻片及 DPX 或 Pennoum 封片。
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| 注意事項 | 必須倒掉染色液，因為氧化的染色液浮渣會留在玻片上。即使在平皿中染色，染液也不能倒掉，而必須用水從下向上置換掉。 |
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