實驗方法原理 真核細胞基因組在提取過程中一般有以下幾步,首先是機械法破細胞抽提;然后去除蛋白質,糖類等細胞內雜質污染;最后純化出DNA。
實驗材料 幼嫩的植物材料
試劑、試劑盒 液氮CTAB抽提緩沖液NaACTris-HCl EDTA氯仿異戊醇TE buffer
儀器、耗材 瓷研缽離心管離心機
實驗步驟
一、實驗試劑及材料
1. 材料:幼嫩的植物材料0.5g左右。
2.
試劑:液氮,CTAB抽提緩沖液:2%CTAB(cetyl trimethyl ammonium bromide,
十六烷基三甲基溴化銨),1%β-巰基乙醇 1.4mol/L Nacl,20mmol/L EDTA,100mmol/L Tris-Hcl
pH8.0,3M NaAC,50mM Tris-HCl pH8.0,20mM EDTA,氯仿:異戊醇(24:1),異丙醇 ,70%乙醇,TE
buffer。
二、實驗方法
1. 取0.5 g植物材料,雙蒸水洗凈,并用濾紙吸干。
2. 植物材料剪成1 cm左右碎片,放入預冷的瓷研缽中。
3. 加入液氮速冷,研磨成細粉(越細越好)。
4. 在5 ml離心管中加入抽提緩沖液2.5 mll,60℃保溫1小時。
5. 15 000 rpm,離心10分鐘。上清轉入另一個新的離心管中。
6. 加入等體積氯仿:異戊醇(24:1),混勻抽提至水乳膠融狀。
7. 15 000 rpm,離心10分鐘。
8. 上清轉入另一個新的離心管中。
9. 加入2/3倍體積預冷異丙醇,-20℃保溫30 min-1 h,緩緩混勻DNA成絮狀折出。
10. 15 000 rpm,離心10分鐘,棄上清。
11. DNA沉淀用 70%乙醇洗2次。
12. 加入400 μl TE buffer溶解DNA。
注意事項
1. 真核細胞基因組較大,在操作中應注意動作輕柔,且在低溫下進行,以最大限度地減少機械和化學作用對DNA的剪切,從而獲得相對完整的DNA。
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