| 實驗方法原理 | 獨特的裂解液/β-巰基乙醇迅速裂解細胞和滅活細胞RNA酶,植物RNA助提劑PLANTaid幫助結合多糖多酚并通過離心去除,然后用乙醇調節結合條件后,RNA在高離序鹽狀態下選擇性吸附于離心柱內硅基質膜,再通過一系列快速的漂洗-離心的步驟,去蛋白液和漂洗液將細胞代謝物,蛋白等雜質去除, 最后低鹽的RNase free H2O將純凈RNA從硅基質膜上洗脫。 |
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| 實驗材料 | |
| 試劑、試劑盒 | |
| 儀器、耗材 | |
| 實驗步驟 | 一、取500 ul裂解液RLT(已經加入β-巰基乙醇),轉入1.5 ml離心管中,加入50 ul PLANTaid混勻備用。 二、液氮中研磨適量植物組織成細粉后,取50 mg細粉轉入上述裝有RLT和PLANTaid的離心管,立即用手劇烈振蕩20秒,充分裂解。 在56℃溫育1-3分鐘有助于裂解植物,但是淀粉含量高的植物不能溫育,因為提高的溫度可能導致淀粉膨脹。 三、用帶鈍針頭的一次性 1 ml(配0.9 mm針頭) 注射器抽打裂解物 10 次或直到得到滿意勻漿結果(或者電動勻漿30秒),可以剪切DNA,降低粘稠度和提高產量。 四、將裂解物13,000rpm離心5-10分鐘,沉淀不能裂解的碎片和結合有多糖多酚的PLANTaid,將所有裂解物上清轉到一個新離心管。 五、較精確估計裂解物(上清)體積,加入0.5體積的無水乙醇,此時可能出現沉淀,但是不影響提取過程,立即吹打混勻,不要離心。 六、將混合物(每次小于700 ul,多可以分兩次加入)加入一個吸附柱RA中,(吸附柱放入收集管中)13 000 rpm離心60秒,棄掉廢液。 七、加700 ul 去蛋白液RW1,室溫放置30秒,12 000 rpm 離心30秒,棄掉廢液。 如果DNA殘留明顯,可在加入RW1后室溫放置5分鐘后再離心。 八、加入500 ul漂洗液RW(請先檢查是否已加入無水乙醇),12 000 rpm 離心30秒,棄掉廢液。加入500 ul漂洗液RW,重復一遍。 九、將吸附柱RA放回空收集管中,13 000 rpm離心2分鐘,盡量除去漂洗液,以免漂洗液中殘留乙醇抑制下游反應。 十、取出吸附柱RA,放入一個RNase free離心管中,根據預期RNA產量在吸附膜的中間部位加30-50 ul RNase free water(事先在 70-90℃水浴中加熱效果更好), 室溫放置1分鐘,12 000 rpm 離心1分鐘。 十一、如果預期RNA產量>30 ug,加30-50 ul RNase free water重復步驟七,合并兩次洗脫液,或者使用第一次的洗脫液加回到吸附柱重復步驟一遍(如果需要RNA濃度高)。 洗脫兩遍的RNA洗脫液濃度高,分兩次洗脫合并洗脫液的RNA產量比前者高15-30%,但是濃度要低,用戶根據需要選擇。 |