真空靜脈血液樣本的采集是對傳統采血方式的一次重大改進。由于是在全封閉系統下完成采血程序，因而從根本上排除了血液污染和交叉感染的可能性；并且因其結構簡單，使用方便，因而易于普及和推廣。但是，目前市場上真空采血管品牌眾多，如產品質量欠佳可直接影響檢測結果。在這里筆者對影響真空采血管質量的一些因素談談見解，不正之處請同行及用戶指正。
1. 真空采血管的硅化質量
用于試管內壁處理的硅油有很多種類，有溶于水和不溶于水的，有溶于有機溶液和不溶于有機溶液的，粘度有極易流動的液體和半固態狀的液體。其間要選出適用于采血管內壁處理，具有良好的化學惰性和生理惰性的硅油絕非一件易事。硅化處理較好的試管，內壁應該是非常光滑的。通過簡單的過水實驗，就能辨別試管內壁處理的好壞。即將２毫升的水放入試管然后倒出，硅化處理好的試管內壁是絕無分散的小水珠殘留在上面。那么可想而知，沒有血細胞掛壁現象的真空管已經為分離出高品質的血清打下了良好的基礎。
2. EDTA-K2添加的均勻程度對血常規結果的影響
由于玻璃管在安全性能上存有很大隱患，故目前使用特種塑料PET試管替代玻璃管成為一種趨勢。由于PET試管有著良好的疏水性，很大程度上加大了真空管的生產難度。眾所周知，當在PET試管內添加液體的EDTA-K2溶液時，由于PET試管的疏水性，一段時間后液態的EDTA-K2由于水分的部分流失，會在試管底部、管口或其他部位形成塊狀結晶，使其的溶解度大大的降低。大塊的EDTA-K2結晶由于不能在短時間內充分與血液接觸并溶于血標本，這樣就容易產生血小板聚集，白細胞分類結果不理想，甚至出現血標本部分凝固等。我們知道，全血細胞分析所選用的EDTA-K2抗凝劑其最佳濃度為1.5～2.2mg/1ml全血。如EDTA-K2濃度太低，抗凝強度不夠，則出現血小板聚集現象；EDTA-K2濃度太高，尤其是有大塊的EDTA-K2結晶存在時，使局部的血細胞處于高滲狀態，此處細胞會出現暫時的收縮，這樣會導致白細胞分類結果不理想等。為了避免因水分流失而形成的結晶現象，一個理想的血常規真空采血管，EDTA-K2晶體應該是非常細小均勻地分布在試管內壁。這樣一旦血液進入試管，均勻分布的EDTA-K2就能迅速地跟血液充分混勻，從而杜絕了血常規結果因真空采血管的原因而出現異常的現象。
3. 分離膠與促凝劑的應用評價
分離膠促凝管是醫院真空管使用最普遍的一種管子，但要做好這種管子也不容易。評價分離膠促凝管品質好壞關鍵在以下幾個方面：①用同一份血液標本，跟空白管做比對，某些離子含量是否會存在偏差。②將采集好含分離膠的血標本管子放在水溫箱里，溫度調到38～39℃，待血標本充分凝固后，離心，然后檢查血清中是否有油滴產生。由于油滴可對生化儀探針造成致命的堵塞，已有許多報道，關于這種現象的存在。③排除不正確的采血方法所造成的溶血因素，由于低劣的生產工藝，分離膠或促凝劑所殘留的有機溶劑是破壞血液標本的元兇。這種破壞往往表現在標本有較多的溶血現象，在血清中間漂浮著分離膠顆粒。另外值得一提的是包括國外真空管知名公司在內都申明血凝管或促凝劑分離膠在采集血標本放置半個小時后離心，這樣能很大程度上確保結果的準確性。
4. 防止真空采血管內的液體霉變
用于血凝和血沉的枸櫞酸鈉抗凝劑試管，生產時對環境及用于溶解的水要求相當高。如果工藝和生產環境不當，或所用的溶解水純度沒達到要求等，那么生產出來的產品在一段時間后試管內的枸櫞酸鈉溶液就會有絮狀物產生（長霉菌），從而造成檢驗結果失真。由于PET管有很好的疏水性，此類管子非特殊包裝，建議在三個月內用完。
除以上所述之外，肝素管和草酸鉀/氟化鈉管由于相對用量較少，在技術上也沒有什么特殊之處，在這里就不一一敘述。另外值得一提的是真空管受海拔高度影響，故高海拔地區應選擇高原型真空采血管。