消化系統藥理實驗中的選擇與應用
（一）消化系統分泌實驗
1．胃液分泌實驗 胃液收集常選用狗和大白鼠。由狗右側嘴角插入胃管收集胃液，大白鼠則需剖腹，從幽門端向胃內插入一直徑約3mm的塑料管，在緊靠幽門處結扎固定，以收集胃液，可進行胃酸的測定和胃蛋白酶的測定。
2．胰液分泌實驗
胰液收集可選用狗、兔或大白鼠。在全麻下進行手術，狗在主胰管開口十二指腸降部，距幽門12cm左右處，要將十二指腸翻轉，在其背面即可找到。兔的胰腺很分散，胰管位于十二指腸的升段，距離幽門約17cm左右處。分別向主胰管內插入細導管收集胰液。大白鼠的胰管與膽管匯集于一個總管，在其入腸處插管固定，并在近肝門處結扎和另行插管，就可分別收集到膽汁和胰液。大白鼠的胰液很少，插入內徑約0.5mm的透明導管后，以胰液充盈的長度作為觀察胰液分泌的指標。慢性實驗時可選用狗作胰瘺手術后收集胰液。
3．膽汁分泌實驗為了觀察某些藥物對泌膽、排膽以及存在于膽系內結石的影響，需要研究用藥前后膽汁流量及其成分的變化。膽汁可分別給動物作膽囊瘺和總膽管瘺收集。膽囊瘺常選用狗、貓、兔和豚鼠進行，而以狗為佳。在全麻下進行手術，以右肋緣下橫切口的暴露最為滿意。如欲觀察肝膽汁的分泌情況需要結扎膽囊管或選用大鼠，因后者無膽囊，所以作總膽管造瘺手術常選用大白鼠。收集膽汁后可進行各種膽汁的化學分析。
（二）消化系統運動實驗
1．動物離體標本實驗消化道平滑肌具有肌源性運動的特點，動物離體的腸段、膽囊、乃至胃腸肌片，只要具有合適的存活環境就可保持其運動機能。這是藥理學研究中常用的一種離體實驗方法，這具有實驗條件較易控制、操作較簡單、用一般儀器設備即能工作等優點，從而應用較廣。
標本制備大都選用兔、豚鼠、大白鼠等動物的組織，也可利用手術中取下或猝死剖檢時取下的消化道器官進行實驗。
取禁食24小時的動物，通常用擊頭致斃法處死，以避免麻醉或失血等對胃腸運動機能的影響。立即常規剖腹，取出所需的胃、腸、膽囊等，去除附著的系膜或脂肪等組織。迅速放在充氧（或含5%CO2）、保溫（37℃）的保溫液中，并以注射器用保溫液將管腔內的食物殘渣洗凈。操作時動作要輕柔，沖洗時不宜采取高壓以免疫組織攣縮。
若以肌片為標本，一般剪取1～5mm寬，1～2cm長的一段即可。若用動物的腸管做實驗時，通常取十二腸或回腸。十二指腸的興奮性、切律性較高，呈現活躍的舒縮運動。回腸運動比較靜息，其運動曲線的基線比較穩定。所用的標本大都取1.5cm左右一段即可。以狗的膽囊做實驗時可截取4mm寬，2cm長的全層肌片。兔、豚鼠等的膽囊較小，取材時常與膽管一起摘下。兔的膽囊可沿其長軸一剖為二，豚鼠則可以整個膽囊或取其半進行實驗。做膽管的離體實驗量，通常取狗的總膽管，將相聯的十二指腸組織切除，留下乳頭以及膽道末端括約肌組織。
離體胃、腸運動的電活動，除了峰形電位外還可記錄到周期性的慢波。它們在胃腸道的不同部位以及不同種屬的動物間存在一定差異（見表10-32）。
2．消化器官運動在體實驗 利用整體動物觀察消化道動物的方法很多，諸如腸管懸吊法、內壓側定法、生物電記錄法、腹窗直視法以及X線檢查等等。這皯方法各有所長，也各有其不足之處，在進行藥理研究時可以酌情選用。
常選用狗、貓或兔，擇其健康成年者，性別不構。由于巴比妥麻醉劑對消化道運動有抑制作用，故有些作者用貓或兔做實驗時，愿意用烏拉坦1.0～1.5g／kg靜脈或腹腔注射進行麻醉。觀察膽道系統的運動則以母狗為佳，因為肋弓角較大容易暴露。在禁食12～24小時后進行實驗。
進行膽道口括約肌部膽道內壓測定實驗時，大都選用狗或貓，也可用兔。狗的膽道位置較深，要求良好的手術暴露。貓的總膽管相對地較粗，操作也較容易，但手術耐受性稍遜于狗。兔的總膽管容易瓣認，壺腹部明顯地呈現于十二指腸第1段的表面，但組織纖維，操作時務必仔細。狗的總膽管粗約2～3mm，位于十二指腸降部、循小網膜右緣而下，在下腔靜脈之前、門脈之右。
（三）催吐、鎮吐、厭食實驗
1．催吐和鎮吐實驗常選用狗和貓做實驗。給狗皮下注射鹽酸阿樸嗎啡1mg/kg；注后2～3分鐘就可以引起惡性嘔吐。用1%硫酸銅或硫酸亞鉛溶液50ml給狗灌胃，約2～3分鐘后也可引起嘔吐，但幾乎無惡性現象。
2．厭食實驗 這是防治肥胖病及其并發癥的研究內容之一。可以選用狗、貓、大鼠、小鼠等進行實驗，猴因有頰囊，且有精神因素參與，故選用者不多。狗容易嘔吐，也有行為因素，故也不理想。一般多選用大白鼠。
（四）消化系統常見病動物模型
1．胃病
急性胃炎的實驗模型常選用大白鼠。實驗前禁食24小時，以水楊酸制劑（如20ml的阿司匹林或水楊酸溶液）按100mg/kg給藥，或以10ml的醋酸或不同濃度的鹽酸（1、10、100ml），或同種動物膽汁、2ml的牛磺膽酸、15%的乙醇等單獨或幾種合用灌胃，4小時后動物胃內發急性彌慢性炎癥變化。
慢性胃炎的實驗模型常選用慢性胃瘺狗，每日經瘺灌70～75℃的熱水300ml，連續60天后可引胃粘膜萎縮，胃酸減少甚至缺失。還可用同種或自身的胃液（按4～5ml/kg取胃液，并濃縮50倍），或胃粘膜的生理鹽水的組織勻漿與Freund佐劑以1：1配成乳劑，皮下注射進行免疫，隔15～30天再注射一次，即可誘發致胃粘膜發生細胞浸潤及萎縮性病變。
急性胃潰瘍的實驗模型常選用200～250g的成年大白鼠，用浸水刺激造成應激性潰瘍。
結扎大白鼠幽門可誘發成胃潰瘍，其成功率與動物禁食情況以及結扎后經歷的時間等有關。一般誘發成功率達85～100分，是最常用的模型之一。
組織胺法常選用雄性白色豚鼠，禁食18～24小時，全麻下找出十二指腸，在十二脂腸的膽管開口上方夾一動脈夾造成狹窄，以使胃液潴留并防止十二脂液返流入胃。皮下注射磷酸組織胺水溶液（2.5～7.5mg/kg，根據動物品種而劑量不同），1小時后即可恒定地復制出胃潰瘍。