一、實驗步驟
1. 殺豬后迅速取出甲狀腺 1~2 個,置于盛有 75%酒精的燒杯中,用冰盒送至實驗室(1 h 以內)。 2. 立即置于pH為7.4 的PBS緩沖液(含青鏈霉素)中,反復漂洗,直至漂洗液清澈透明。 3. 去除包膜及結締組織,用眼科剪子、鑷子將甲狀腺組織剪成1mm3 大小的碎塊。 4. 置含0.25%胰酶和300 U/ml 膠原酶的容器中,放于 37℃溫箱中消化60 min,每隔15min 需搖動一次。 5. 用吸管將上清液的三分之二吸入離心管中,并加入含有胎牛血清的培養基終止消化。 6. 以1000 rpm 離心10分鐘后,棄上清。 7. 將細胞沉淀用F-12 培養基制成細胞懸液,充分吹打并用不銹鋼網(200目)過濾,再以1000 rpm 離心10分鐘,棄上清。 8. 沉淀懸于含15% 胎牛血清和1 U/L牛 TSH的F-12 培養基中,臺盼藍染色證明活細胞數大于95%,調整細胞濃度接種于培養板中(1 ml/孔)。 9. 置于 37℃的5% CO2 孵箱中,每 2-3 天換液一次,至細胞融合成片后用于實驗。 二、結果
豬甲狀腺細胞培養 24 小時,鏡下細胞貼壁,呈聚集生長,細胞呈圓形或橢圓形,如下圖。

圖 1 培養 24 小時后的豬甲狀腺細胞 展開 |