從懸浮細胞中制備用于DMS足跡分析的基因組DNA
| 實驗材料 | |
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| 試劑、試劑盒 | |
| 儀器、耗材 | |
| 實驗步驟 | 1) 在50 mL螺口聚丙烯管中分別準備3份49 mL PBS,用前置于冰上預冷至少30 min。配制裂解液并且在15 mL螺口聚丙烯管中準備3份2.7 mL裂解液。 2) 將2份含有0.5×108?1×l08細胞的培養液轉移至50 mL聚丙烯管中,在臺式離心 機上室溫500 g (在IEC Centra-7R離心機上為1500r/min)離心5 min,吸出并棄上清。留下足以將細胞重懸至1 mL終體積的培養液,用手指彈擊管底部,或用移液器輕輕地上下抽吸以重懸細胞。 3) 對于對照(未處理的)懸浮細胞:將1 mL重懸細胞加入1份49 mL冰冷的PBS溶液中,輕輕顛倒以充分混合,于4℃ 500 g離心5 min,然后進行步驟8。 4) 對于DMS處理懸浮細胞:將1 mL重懸細胞轉移到L 5 mL微量離心管中,然后在通風櫥中的37℃水浴中保溫。 5) 將10μL室溫100% DMS加入到90μL100%乙醇制備10%的DMS溶液。在渦旋混 合器上振蕩25 s以充分混勻,稍加離心,收集液滴。10%的DMS用乙醇配制是由于該濃度的DMS不溶于水。 6) 加入10μL 10%的DMS溶液于保溫的細胞中,輕輕顛倒以混勻,37℃溫育1 min。 立即將細胞加入到冰冷的1份49 mL PBS溶液中,輕輕顛倒以混勻,于4℃500 g離心 5 min。此處所列出的DMS的用量及溫育時間,適用于作為預備試驗的出發條件,為得到最佳的DMS足跡,可能有必要對它們進行修正。 7) 吸出并棄上清。然后從第3份冰冷的PBS溶液中取1?5 mL將細胞迅速重懸,立即加入冰冷的PBS到50 mL管中,輕輕顛倒以混合。在4℃ 500 g離心5 min。 8) 對于對照細胞和處理細胞:吸出并棄上清。細胞重懸于300μL冰冷的PBS,然后轉移到獨立的每份2.7 mL的裂解液中,輕輕顛倒以混合。繼續DNA提取步驟,并進行對照DNA的DMS處理及哌啶斷裂 |