一種用于PCR的植物基因組DNA快速制備方法
來源:方統科技
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摘要: 本文介紹了一種用于PCR的植物基因組DNA的快速制備方法。該方法只需將少量(4~6mg)植物葉片、適量(200μl) TE緩沖液、和一粒鎢合金珠放入離心管,在組織細胞研磨器中振動5min破碎組織后,直接取1μl DNA溶液作為PCR的模板。本方法具有簡單快速、成本低、擴增效果好等優點,特別適合于大量樣品的基因型檢測。
王蘭1, 2 龍云銘2 劉耀光2
1 華南農業大學農學院,廣東省植物分子育種重點實驗室
2 華南農業大學生命科學學院,廣東省教育廳植物功能基因組與生物技術重點實驗室
摘要:本文介紹了一種用于PCR的植物基因組DNA的快速制備方法。該方法只需將少量(4~6mg)植物葉片、適量(200μl) TE緩沖液、和一粒鎢合金珠放入離心管,在組織細胞研磨器中振動5min破碎組織后,直接取1μl DNA溶液作為PCR的模板。本方法具有簡單快速、成本低、擴增效果好等優點,特別適合于大量樣品的基因型檢測。
關鍵詞: 水稻,DNA制備,PCR
隨著生物技術的迅速發展,PCR技術已廣泛應用于遺傳育種的各個領域,如種子純度鑒定、親緣關系的分析、分子標記輔助育種、基因定位以及轉基因植株檢測等。在大規模的基于PCR的基因型檢測作業中,高效快速的模板DNA制備顯得非常重要。自Marmur 1961年建立用十二烷基磺酸鈉(SDS)和氯仿從生物細胞中分離提取DNA樣品的經典方法以來,人們一直致力于對DNA抽提方法的探討,并先后報道了一些關于DNA抽提的方法(Dellaporta et al., 1983; 宣樸等,1998;汪秀峰等,2002;周淑芬等,2004)。但這些方法仍然煩瑣費時。本研究對作為PCR模板的植物基因組DNA制備方法作了簡化,只需將少量葉片、適量TE緩沖液、和一粒鎢合金珠放入離心管,在組織細胞研磨器中振蕩約5min破碎組織后,直接取1μl DNA溶液作為PCR的模板。本方法具有簡單快速、成本低、擴增效果好等優點,特別適合于大規模的基因型檢測。
1 材料與方法
1.1 試驗材料
試驗材料為粳稻品種臺中65(T65)及其雜種不育基因Sc的近等基因系E5,以及它們雜交組合構建的F2群體,以及擬南芥(Arabidopsis thaliana)生態型Columbia。
1.2 基因組DNA制備方法
剪取(或用手摘取)水稻苗或成株葉片(剪成約3~5mm小段)或擬南芥葉片約4~6mg,12~15mg,或25~30mg,放入2ml離心管中(注:2ml離心管的底部較寬,利于鎢合金珠的振蕩),加入200μl
TE (10mmol/L Tris, pH8.0; 0.5mmol/L EDTA, pH8.0.
注:本TE中的EDTA濃度是常規TE的1/2)或200μl去離子水,放入一粒3mm直徑的鎢合金珠(Qiagen,
Cat.69997),在多功能組織細胞研磨器(方統生物科技有限公司,型號MTM-60)上振動約5min,把葉片打碎。取17μl溶液以瓊脂糖凝膠電泳檢測模板DNA質量,取1μl溶液用于PCR擴增。
1.3 PCR引物反應
根據公共數據庫的水稻和擬南芥基因組序列設計PCR引物(表1),由英俊公司合成。Taq酶從杰順公司購買。
表1 PCR引物序列
| 引物 | 引物序列 |
| PR1 | 5’-TCTGTACAAGTTGAGGAATCTCCG-3’ |
| 5’-TGCCACCCACAGCAAGCCTTATGA-3’ | |
| PR2 | 5’-ACCCCATGGCGACGAATTCC-3’ |
| 5’-CAGATTAAGGCAGGAAGTCC-3’ | |
| PA | 5’-GAAACTGATCAGTTGCTTTCAC-3’ |
| 5’-CTGCTACACAATCTCGTTATGGAG-3’ | |
| L14-121 | 5’-CTTGACAATTGCAAGGCCAA-3’ |
| 5’-GAGGTAGGCATGAGACATGC-3’ | |
| J04-91 | 5’-GTGCGGATCGATCGGCAGCA-3’ |
| 5’-GCTCAGATCCGGCCAGATTC-3’ | |
| P24-83 | 5’-CAGAACAGCATTCAGGCATC-3’ |
| 5’-ATCCTGATAATGTGTGGCGC-3’ | |
| P24-93 | 5’-CATTGGTTAAAGGATGGTAC-3’ |
| 5’-TAGTACTGCTAGGACCATCC-3’ |
注:PA為擬南芥引物,其余為水稻引物,其中L14-121~P24-93為插入/缺失(InDel)標記引物。
每個PCR反應液(20μl)組成為:1× Buffer,0.2mmole/L dNTPs, 1U Taq酶,250nmole/L每種引物,1μl上述DNA溶液。PCR反應在My Cycler (BioRad)熱循環儀上進行。用引物反應程序為94℃預變性3min,擴增35個循環,每個循環94℃ 20s, 55~58℃ 30s,72℃ 60s (InDel標記的PCR用30s);最后72℃ 2min。
1.4 聚丙烯酰胺凝膠電泳及檢測
1.4.1 聚丙烯酰胺凝膠的制備
配制6%的聚丙烯酰胺凝膠100ml工作液:分別加5.7 g丙烯酰胺
(Acri),0.3g N,N-亞甲基雙丙烯酰胺(Bis-Acri),12g尿素,10ml
10×TBE,最后加水至100ml。灌膠前,每10ml膠液加入80μl
10%過硫酸銨,4μl四甲基乙二胺(TEMED),搖勻后迅速灌膠,膠凝固后即可點樣電泳,并通過銀染檢測實驗結果。
1.4.2 銀染
先用0.1% AgNO3染色液染色10~15min,再用顯影液(100mL中含NaOH 0.5g、四硼酸鈉0.019g, 0.4mL甲醛)顯色,等條帶清晰后,直接用自來水沖洗終止顯色反應,用凝膠成像儀(BioRad)或數碼相機拍照并記錄實驗結果。
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