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  • 發布時間:2020-04-23 20:37 原文鏈接: 病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒使用說明

    病毒基因組DNA/RNA提取試劑盒

    一、簡介

    病毒總核酸提取試劑盒適合于從血清、血漿、組織勻漿等樣品中提取病毒總核酸。試劑盒基于硅膠柱純化技術,提取過程中無需使用有毒的酚氯仿抽提,也無需進行耗時的醇類沉淀。該產品已經成功地提取了乙肝A/C、丙肝、以及諾如病毒標準品等的核酸。獲得的DNA/RNA可直接用于PCR、RT-PCR、以及LAMP等系列下游實驗。

    二、組成

    071091M



    成份

    裝量


    提取次數

    48次


    核酸吸附柱

    48個


    2ml 收集管

    Proteinase K

    Protease Dissolve Buffer

    48個

    24 mg

    2 ml


    Carrier RNA

    250 μg


    Buffer AL

    20 ml


    Buffer VHB

    11 ml


    Buffer RW2

    20 ml


    Nuclease Free Water

    10 ml


    注意:

    1. Carrier RNA 固體使用前必須用 Nuclease Free Water 溶解至 1μg/μl,渦旋溶解。分裝保存-70℃。如需長期保存于-20℃,請先按照使用次數分裝后保存。

    2. 溶解Proteinase K(20mg/ml):加入Protease Dissolve Buffer溶解Proteinase K至終濃度為 20mg/ml。Proteinase K干粉在2-8℃保存一年,但溶解的 Proteinase K 須分裝保存于-20℃。 反復凍融 Proteinase K 會影響其活性。

    3. Buffer VHB 使用前必須用14 ml無水乙醇稀釋,并于室溫保存。

    4. Buffer RW2 使用前必須用80 ml無水乙醇稀釋,并于室溫保存。

    三、保質期

    本產品除Proteinase K和Carrier RNA外,其它組份可在室溫(15-25℃)保存12個月,長期保存時需置于2-8℃。Proteinase K 和 Carrier RNA 干粉室溫運輸,收到試產品后請保存于-20℃,溶解后分裝保存于-20℃。

    四、需要準備的材料和工具

    • Buffer PBS

    • 無水乙醇

    • 潔凈的鑷子和剪刀

    • 微量移液器(100-1000μl,10-100μl)

    • 無RNA酶的離心管和吸頭

    • 渦旋振蕩器

    • 離心機(轉速≥10,000 rpm)

    五、實驗步驟

    • 轉移20 μl Proteinase K 至1.5 ml離心管中。

    • 轉移200 μl樣品,如血清、血漿、尿液、 培養液上清、或其它無細胞體液至裝有 Proteinase K 的離心管中,振蕩混勻5秒。若樣品不足200 μl,用Buffer PBS或Nuclease Free Water 補足。

    (固體組織樣品先用 Buffer PBS浸泡或勻漿后,離心取上清進行操作;干粉樣品請先用Buffer PBS充分溶解后離心取上清進行操作。)

    • 轉移200 μl Buffer AL/Carrier RNA至樣品中,渦旋混勻15秒。

    使用前,按每1 ml Buffer AL加入15 μl Carrier RNA(1 μg/μl)。該混合液室溫可保存2天。

    • 56oC水浴10分鐘。

    • 加入250μl 無水乙醇至裂解液中,渦旋混勻 15 秒。室溫靜置 3 分鐘。

    • 把核酸吸附柱裝在2ml 收集管中。轉移混合液至柱子中。8,000 g離心 30-60秒。

    • 倒棄濾液把柱子裝回收集管中。加入500 μl Buffer VHB(已用無水乙醇稀釋)至柱子中。8,000 g離心30-60秒。

    使用前 Buffer VHB 必須按瓶子標簽所示用無水乙醇稀釋。

    • 倒棄濾液把柱子裝回收集管中。加入500 μl Buffer RW2(已用無水乙醇稀釋)至柱子中。8,000 g 離心30-60秒。

    使用前 Buffer RW2 必須按瓶子標簽所示用無水乙醇稀釋。

    • 倒棄濾液把柱子裝回收集管。加入500 μl Buffer RW2(已用無水乙醇稀釋)至柱子中。8,000 g離心30-60秒。

    • 倒棄濾液把柱子套回收集管。10,000 rpm 離心空柱3分鐘甩干柱子。

    • 將柱子轉移至新的1.5ml離心管。加入15~30 μl Nuclease Free Water至柱子的膜中央。13,000 g離心1分鐘。

    • 棄去柱子,把DNA/RNA 保存于-80oC。

    六、常見問題解答

    1. 柱子堵塞

    • 樣品用量太多:處理動物抗凝血液時,樣品量控制在100~150 μl。盡量使用無細胞的樣品,如血漿、血清、組織勻漿液的上清等。

    • Proteinase K活性下降:重新制備Proteinase K。使用后Proteinase K必須保存于-20℃。Proteinase K與 Buffer AL不能預先混合。

    • 樣品含固體顆粒:在第5步加入乙醇前,10,000 g離心3分鐘去除未消化的雜質,轉移上清液至新的離心管后再加入乙醇。

    • 樣品裂解不充分:樣品與Buffer AL混勻不充分。重新提取,加入Buffer AL后先顛倒混勻3~5次,然后以最高速度渦旋讓樣品與Buffer AL充分混勻。

    2. 下游應用結果不理想

    • 樣品被反復解凍:避免反復凍融樣品。推薦使用新鮮樣品或只解凍過一次的樣品。

    • Nuclease Free Water 被污染:更換新的 Nuclease Free Water或DEPC處理水。

    • 試劑準備有誤:按瓶子標簽所示,加入合適體積的無水乙醇至 Buffer VHB 和Buffer RW2 中。

    • Proteinase K活性下降:重新制備Proteinase K。使用后Proteinase K 必須立即保存于-20℃。分裝保存 Proteinase K,避免反復凍融。

    • 乙醇殘留:柱子在洗脫前,需要空甩去除乙醇。對于敏感的應用,柱子在洗脫后,打開柱子的蓋子,放置 10~15 分鐘讓乙醇徹底揮發。

    • 洗脫效率:處理富含 DNA 的樣品時,把 Nuclease Free Water預熱至55℃后再進行洗脫,有利于提高DNA得率。


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