目的基因的PCR擴增

實驗概要

進行目的基因的PCR擴增

實驗原理

PCR（聚合酶鏈式反應）是一種選擇性體外擴增DNA或RNA的方法。它包括3個基本步驟：⑴變性：目的雙鏈DNA片段在94℃下解鏈；⑵退火：兩種寡核苷酸引物在適當溫度（50℃左右）下與模板上的目的序列通過氫鍵配對；⑶延伸：在Taq   DNA聚合酶合成DNA的最適溫度下，以目的DNA為模板進行合成。由這3個基本步驟組成一輪循環，理論上每一輪循環將使目的DNA擴增一倍，這些經合成產生的DNA又可作為下一輪循環的模板，所以經25~35輪循環就可使DNA擴增達10⁶倍。

主要試劑

Taq酶 
相應引物 
dNTP等

實驗步驟

1.PCR反應
 (1) 所用溶液融化后置于冰上。
 (2) 依次混勻下列試劑：

25μl      10×PCR buffer

15μl      25mmol/L MgCl₂

25μl      4種dNTP

5μl       引物1

5μl       引物2

124μl     ddH₂O

1μl       Taq 酶  

     混勻后離心5秒種。      
   (3) 分成10管，每管各加5μl模板DNA（約1ng），編號。
  (4) 混勻后離心5秒種，PCR擴增。
  (5) 參數設定

2. 電泳

取10μl擴增產物用1%瓊脂糖膠進行電泳分析，檢查反應產物及長度。

注意事項

1. PCR反應非常靈敏，操作應盡量在無菌操作臺中進行。
2. 吸頭、離心管應高壓滅菌，每次吸頭用畢應更換，不要相互污染試劑。
3. 試劑前，應短促離心10秒鐘，然后再打開管蓋，以防手套污染試劑及管壁上的試劑污染吸頭側面。