離心條件的選擇：
速度：顆粒小用較高速度，顆粒大則用較低速度。有的物體如細胞，有囊膜的病毒，轉速太高會變形或失活，要較低轉速和較長時間。
溫度：溫度低些樣品不易失活。但并非越低越好。溫度太低鹽易析出或結晶，無法離心。溫度太低蔗糖溶液粘度迅速增加，形成很大的阻力。使沉降過程變得很難進行離心管也會發脆，樣品也容易成團，影響區帶的形成。常用的離心溫度是10-15℃。
(1) 直接吸取
用長針頭注射器直接吸取所需的區帶．該法適用于只有一、二條帶的情況。當形成的帶子很多，或者帶子很弱，或要對整個梯度進行分析時不適用。
(2) 頂替法
把很稠很重的介質(如60％－70％)的蔗糖液慢慢注入離心管底部，將離心管中的溶液頂替出來。
(3) 穿刺法
先用一塊膠布貼在離心管底部，再用針頭刺穿離心管的底部，使液體順針頭逐滴流出，再分部收集。
(4) 虹吸法
用一根很細的管插到離心管的底部，將溶液導出分段接收，要注意防止已分開的區帶被擾亂。
A. 通過一針管將密的液體泵到梯度的底部，然后將一專門的蓋帽導出。
B. 可穿刺離心管底，使梯度滴出，將一具有合適閥門的蓋帽放到離心管頂可控制替換的速度。
C. 可在離心管頂裝一蓋帽，泵入空氣或輕的液體，通過插到離心管底部的針管將梯度替換出。
離心后轉頭和離心管的處理：離心結束后，離心管可用有機碘，新潔爾滅，過氧乙酸等消毒，有些管可以高壓滅菌（如PP，PC，PF見前節介紹離心管特性）。
轉頭可用清水洗凈，禁止用熱水（會退火，影響強度），腐蝕劑和硬刷子（破壞保護層，失去平衡精度）。盡快擦干放好，嚴禁碰撞。