一、切割分離法
在進行組織塊培養時,可采用剪切法,一般多剪切成1 mm3大小的塊。
具體操作如下:
1. 無菌切取1 cm3組織一塊,置入青霉素瓶或小燒杯中,左手斜持容器,右手持眼科尖剪或彎剪(剪柄較長為好)伸入容器中,反復剪切組織至1 mm3大小為止(成糊狀)。
2. 用吸管吸取Hanks液把附著在剪刀上的組織小塊沖下,并再補加3~5 毫升Hanks液后,用吸管反復輕輕吸吹沖打片刻,低速離心、去上清、余下組織塊即可用于培養。
3. 剪刀剪切法可能對組織有一定損傷,但操作比較方便。
亦可用手術刀反復切割法,把組織塊放在凹窩玻璃中,兩手各持尖手術刀一把,交錯反復切害割至1 mm3為止。手術刀切割法對組織損傷較小,但在空氣中暴露時間較長,污染機會大些。
以上兩方法都適用于組織塊培養法。 二、機械分散法
某些軟組織如腦、胚胎以及一些腫瘤組織等,可采用機械法進行分散。
常用者有兩種,一是把組織放入注射器針管中壓擠法,二是把組織置于不銹鋼紗網中用鈍物壓取法。
不論用那一種方法,都應把組織塊先剪成小塊后再處理。
其中以壓取法較多用,其程序如下:
1. 清洗
取得組織后,先用BSS洗去表面血污,然后預切成5~10 mm3的小塊,置入不銹鋼網篩中(1 mm 孔徑); 2. 壓擠
把網篩放在大碟皿上方,一手持網篩柄,另手用無菌度管末端徑輕壓擠組織,使之穿過紗網,然后用吸管吸取營養液把紗網上剩余組織吹洗掉;
3. 反復
用吸管從碟皿中吸出較大組織塊,置入10 μm 篩中,進行再壓擠,方法同2;
4. 鏡檢
被濾過的懸液即可用于培養;可先吸取不許懸液鏡檢,如組織塊過大,可再用20 μm 篩做進一步壓擠,以分散成單個細胞或細胞團;
5. 培養
計數細胞后,接種培養。 展開 |