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  • 發布時間:2019-03-31 20:42 原文鏈接: 組織的分離實驗_EDTA消化分離法

    實驗方法原理EDTA是一種非酶性消化物,常用不含Ca2+和Mg2+的BSS 配成0.02%的工作液。

    關于EDTA的作用機制一般認為是:一些組織,尤其是上皮組織,在
    生存中需要Ca2+和Mg2+才能維持組織的完整性。EDTA能從這些組織生存環境中吸收這些離子,形成螯合物,能促進細胞相互分離。


    EDTA 作用比胰蛋白酶緩和,很少用于單獨消化新鮮組織(傳代細胞可單用),如與胰蛋白酶按不同比例相混合并用,消化作用更好。EDTA 最適消化傳代細胞,也多與胰蛋白酶混合使用(1:1 或2:1)。

    實驗材料

    營養液

    試劑、試劑盒

    EDTA胰蛋白酶Hanks

    儀器、耗材

    恒溫箱吸管

    實驗步驟

    用ETDA 和胰蛋白酶混合消化法傳代的過程如下

    1.  吸出培養瓶內營養液,注入EDTA(0.02%)和胰蛋白酶(0.25%)混合液(1:1),注入量以能覆蓋細胞為度,置37 ℃溫箱或室溫中作用3 分~5 分鐘。

    在消化過程中,要在鏡下隨時監視細胞狀態,當見到細胞胞質回縮,
    胞體趨于變圓,細胞相互間縫隙變大時,便立即終止消化。

    細胞上述變化
    在已連接成片的細胞最為明顯;可見細胞由于胞質回縮,而相互分離,遂失去原來緊密接觸關系,出現明顯可見的縫隙。如消化過度則細胞能完全從瓶壁脫落,這時需要做離心分離以防細胞丟失,增加了麻煩;


    2.  吸出消化液,注入適量Hanks液洗一二次;注意注入時要緩慢,不要讓液體直接沖刷細胞多的部位,朝向瓶底或瓶角部為好,以避免把細胞從瓶壁上沖下來,然后手持培養瓶輕輕晃動,讓Hanks液體在細胞面上來回流動,以洗掉殘余的消化液,不要用力過猛,否則能把附著不牢的細胞沖掉,減少細胞數量;


    3.  吸出Hanks液,加入適量培養液后,用吸管吸、吹營養液,反復輕輕吹打瓶壁上細胞,使之脫落入培養液中形成細胞懸液。

    展開 
    注意事項

    1.  使用EDTA處理細胞后,因血清對其無中和作用,一定要用Hanks液產中洗液,因殘留在培養液中的EDTA對細胞能產生不良作用。


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