實驗步驟
1．入無菌室之前用肥皂洗手，用75%酒精擦拭消毒雙手。
2．倒置顯微鏡下觀察細胞形態，確定細胞是否需要傳代及細胞需要稀釋的倍數。將培養用液置37℃下預熱。
3．超凈臺臺面應整潔，用0.1%新潔爾滅溶液擦凈。
4．打開超凈臺的紫外燈照射臺面20min左右，關閉超凈臺的紫外燈，打開抽風機清潔空氣，除去臭氧。
5．點燃酒精燈；取出無菌試管，巴斯德吸管和刻度吸管；安上橡皮頭；過酒精燈火焰略燒后插在無菌試管內。
6．將培養用液瓶口用75%酒精消毒，過酒精燈火焰后斜置于酒精燈旁的架子上。
7．倒掉培養細胞的舊培養基。酌情可用2—3mLHanks液洗去殘留的舊培養基，或用少量胰酶涮洗一下。
8．每個大培養瓶加入1mL胰酶，小瓶用量酌減，蓋好瓶蓋后在倒置顯微鏡下觀察，當細胞收回突起變圓時立即翻轉培養瓶，使細胞脫離胰酶，然后將胰酶倒掉。注意勿使細胞提早脫落入消化液中。
9．加入少量的含血清的新鮮培養基，反復吹打消化好的細胞使其脫壁并分散，再根據分傳瓶數補加一定量的含血清的新鮮培養基(7～10mL/大瓶，3～5mL/小瓶)制成細胞懸液，然后分裝到新培養瓶中。蓋上瓶蓋，適度擰緊后再稍回轉，以利于CO?氣體的進入，將培養瓶放回CO?培養箱。
傳代培養中的細胞
10．對懸浮培養細胞，步驟7-9不做。可將細胞懸液進行離心去除舊培養基上清，加入新鮮培養基，然后分裝到各瓶中。
【注意事項】
1．傳代培養時要注意無菌操作并防止細胞之間的交叉污染。所有操作要盡量靠近酒精燈火焰。每次最好只進行一種細胞的操作。每一種細胞使用一套器材。培養用液應嚴格分開。
2．每天觀察細胞形態，掌握好細胞是否健康的標準：健康細胞的形態飽滿，折光性好，生長致密時即可傳代。
3．如發現細胞有污染跡象，應立即采取措施，一般應棄置污染的細胞，如果必須挽救，可加含有抗生素的BSS或培養基反復清洗，隨后培養基中加入較大量的抗菌素，并經常更換培養基等。