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  • 發布時間:2019-09-12 15:00 原文鏈接: 經培養外周血細胞的染色體制備實驗

               

    實驗材料

    用 Vacutainer (BectonDickinson) 或加有不含防腐劑的肝素納.(25U  ml) 的注射 器 獲取肝素化的全血

    試劑、試劑盒

    完全的 RPMI 10% FBS (胎牛血清)培養基 100 X 植物血凝素 氨甲蝶呤 脫氧胸嘧啶核苷 秋水仙素 氯化鉀 固定劑

    儀器、耗材

    無菌錐形聚丙烯離心 TB注射器

    實驗步驟

    基本方案 外周血培養和分裂中期細胞收獲

    1.應用含有肝素鈉的 Vacutainer 或含有 25U/ml 血的無防腐劑肝素鈉(不要應用其他抗凝劑)的注射器,經靜脈穿刺采集外周血。盡快開始培養(推薦),或 4°C 保存不超過 4d。室溫運輸。

    2.用帶有 21 G 針頭的 TB 注射器,接種 0.25 ml 全血至無菌 15 ml 聚丙烯離心管,內含 5 ml 完全 RPMI,其中含有 10%FBS 及慶大霉素。<3 周的新生兒加全血 0.2 ml,任何一管中都不要超過 0.5 ml。加人重新溶解的 100XPHA0.05 ml。

    每培養管可制作 3~5 張鋪滿的玻片(或更多張未鋪滿的玻片)。

    3a. 標準樣品:培養管傾斜 45°(—定的角度有利于空氣交換并防止沉淀堆積)培養 2~4d(最佳 3d)。

    3b. 新生兒:如描述的直接收獲或培養 1~2d 后收獲(2d 最佳)。

    3c. 老年人:此年齡組的淋巴細胞對 PHA 的反應較慢,因此在培養 3~4d 后收獲。

    4.可選方案:對于較長的染色體和更多的有絲分裂細胞,應用以下的方法(圖 4.1.1) 可獲得更好的同步化細胞。收獲前一天,加人 0.05 ml 的 10 mmol/L 氨甲蝶呤(終濃度為 10—7mol/L) 以阻斷 DNA 復制。繼續培養 16~18 h(不超過 18 h)。第二天,加入 0.05 ml 的 lmmol/L 脫氧胸嘧啶核苷(終濃度為 10-5mol/L) 以解除氨甲蝶呤的阻斷作用。繼續培養約 4 h(時間是關鍵因素)。

    5.培養 3~4d(第 3 步),或同步化(第 4 步)后,直接加入 lOug/ml 秋水仙素 25ul (終濃度為 O.OSug/ml),啟動收獲,孵育 30 min。室溫 180 g 離心 8 min,棄上清。

    6.于室溫加入 75 mmol/LKa 溶液 6 ml,并輕輕地使細胞重懸。室溫靜置 15 min,根據沉淀物體積調整 KCl 體積以達到最佳條件,比延長時間更有效。

    7.用巴氏管加入固定劑 10~12 滴,混勻。離心,同第 5 步。

    8.保留 0.5 ml 上清,利用巴氏管輕輕吹吸,使棕色的塊狀物重新懸浮。避免吸入過多而使其黏附于玻璃管上。勿將吸管前端緊壓管底。加入 1 ml 固定劑并立即輕輕混勻,以固定劑調整體積至 5 ml 并混勻。離心,同第 5 步。

    9.棄上清,以 5 ml 固定劑重懸沉淀物,離心,同第 5 步。

    10.棄上清,以適當體積固定劑重懸沉淀物至類似稀牛奶的混懸液。室溫靜置 30 mm,或 4°C 過夜(較長固定時間有利于染色體分散)。

    11.制片,分析分散開的染色體(支持方案)。

    支持方案 染色體玻片制備

    此方法適用于多種方法培養的細胞:外周血、骨髓(單元 10.1)、腹水、胸水、羊水(單元 8.2) 和培養瓶收獲細胞(單元 8.1、單元 8.3 和單元 10.2),雜交或放射雜交體細胞(單元 3.1),淋巴細胞株,非人類的雜交瘤細胞。總之,該方法適合于任何經培養、固定的有絲分裂細胞懸液制備染色體玻片。

    1.從甲醇中取出玻片,用不含棉的絨布擦凈(玻片務必潔凈)。再次將玻片浸人甲醇,然后以去離子水反復沖洗,直至將甲醇沖凈,*并且在玻片表面留有均勻的一層水膜。

    2.以拇指和食指拿住玻片磨砂的一端,傾斜玻片使其長邊與工作臺面平行,用吸水紙接觸玻片下側長邊,吸干玻片上多余水分。使玻片傾斜于工作臺面呈 30。角,并使玻片下側的長邊與吸水紙保持接觸,有水層的一面向上(圖 4.1.2)。

    3.水平持巴氏管于玻片上方 1~2in 處,連續、均勻滴加細胞混懸液 3 滴,移動方向朝向磨砂一端。每一滴平均占有玻片的 1/3 寬度,滴在傾斜玻片上的液滴,在其接觸到玻片的同時撥散開來。如果細胞分散的面積集中在液滴滴下位置,液滴周圍細胞較少,則應在滴片時減小玻片與工作臺之間的角度(<30°)

    4.吸去多余的固定劑,按照第 2 步使玻片傾斜 30°,滴加新鮮配制的固定劑,用巴氏管一滴一滴地滴加。從抬高的無磨砂的一端開始移向磨砂的一端,滴在玻片抬高的邊緣,形成均勻的固定劑的前端。

    5.再次吸干玻片下側長邊邊緣水分,并將玻片背面擦干。將玻片磨砂端向上傾斜 30。,滴有細胞的一面向上,于空氣中晾干,使其充分分散。如果玻片周邊細胞分散效果不佳,可參見表 4.1.1 操作(如調整溫度為 20?22°C,相對濕度為 50%)。

    6.在相差顯微鏡下尋找形態及分散良好的染色體觀察。祧選染色體分布均勻、一致、密度適中且沒有染色體相互重疊的玻片,為了利于獲得理想的染色體條帶或雜交信號,理想的染色體應平整、條帶分明、著色一致。

    7.玻片儲存在清潔、干燥、陰暗處,室溫(短期)或一 70°C 凍存(長期)保存。

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