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  • 發布時間:2019-04-03 20:42 原文鏈接: 結腸隱窩的分離和培養實驗

    實驗方法原理用膠原蛋 A 酶 和 dispase 消化切碎的組織塊,然后用山梨糖醇分離隱窩。
    試劑、試劑盒

    HBSS PSG消化混合液生長培養液S-DMEM

    儀器、耗材

    90 mm Petri 培養皿普通容器24 孔培養板保鮮膜培養瓶Moveue 吸管

    實驗步驟

    材料

    無菌

    1. HBSS/PSG: 添加 lOOU/ml 青霉素、3ug/ml 鏈霉素和 25ug/ml 慶大霉素的 HBSS。
    2. 消化混合液:含有 150U/ml XI 型膠原酶、40ug/ml dispase 和 1% FBS,用 DMEM 配制。
    3. 生長培養液:DMEM,添加 25 mmol/L 葡萄糖、6.8 mmol/L 丙酮酸鹽、0.25U/ml 胰島素、50ng/ml EGF、2.5% FBS 和上述 HBSS 中的抗菌素,在 7.5% CO2 條件下用碳酸氫鈉調整 pH 至 7.4。
    4. S-DMEM: 含有 2% 山梨糖醇的生長培養液,過濾滅菌

    以上液體應為 37℃

    5. 90 mm Petri 培養皿 


    6. 普通容器或 30~50 ml 離心管 


    7. 24 孔培養板,用膠原蛋蛋白預涂:
    (a) 稀釋 10X Vitrogen 儲存液;
    (b ) 每孔加入 0.5 ml Vitrogen,孵育 3 h;
    (c) 吸去多余的 Vitrogen,將培養板放入層流超凈工作臺,風干。


    8. 可用保鮮膜(Saran Wrap) 包裹,在 37℃ 條件下保存,于 1 周內使用。


    9. 25 cm2 培養瓶 


    10. 手術刀(4 號刀柄,22 號刀片)


    11. Moveue 吸管或類似的大孔徑吸管

    二、操作步驟

    人結腸隱窩的分離


    1. 從病人切除結腸后,盡快將組織放人 DMEM 中。初步研究表明,只要盡快放人 DMEM,結腸組織可在 4℃ 條件下短時間內(2 h) 保存,但不應保存更長時間。


    2. 用 1X HBSS/PSG 清洗結腸組織 2 次,以清除污染物。 


    3. 將結腸組織移入盛有 HBSS/PSG 的干凈 Petri 培養皿。


    4. 盡量除去平滑肌,用兩把相對的手術刀將組織切成小塊。


    5. 將組織塊移入盛有 20 ml HBSS/PSG 的 25 cm2 培養瓶,通過用 Movette 吸管吹打沖洗組織塊。


    6. 讓組織塊沉下,然后吸去 HBSS/PSG。


    7. 重復沖洗,直至 HBSS/PSG 清澈。常需重復沖洗 5 次。


    8. 將組織塊移入 Petri 培養肌,并吸去多余的 HBSS/PSG。


    9. 用手術刀修切組織塊,使組織塊面相當平。用大口徑吸管將組織塊移入 25 cm2培養瓶。須提前用 HBSS/PSG 將吸管內面弄濕,以防組織塊粘貼吸管。


    10. 靜置組織塊,然后吸去多余的 HBSS/PSG。


    11. 加人 25~30 ml 混合消化液。


    12. 在 37℃ 條件下孵育 1 h 。


    13. 換混合消化液:
    (a) 讓組織沉下。
    (b) 輕輕從培養瓶吸去混合消化液,勿吸去未被消化的組織塊。
    (c) 加人混合消化液,在 37℃ 條件下繼續孵育 1~2 h 。
    (d ) 每 15~30 min 檢查組織 1 次,勿使隱窩過度消化。約 70%~80% 隱窩分離時,消化過程即結束。

    其他說明 不要等到全部隱窩被分離,由于過度消化反而導致得到的隱窩減少。
    人結腸隱窩的沉降

    用山梨糖醇沉降法純化已分離的隱窩。在沉降管頂部可見到較大的脂肪和間質組織的凝集物。由于凝集物會影響沉降,應在開始幾個步驟將凝集物除去。


    14. 將培養瓶內消化的組織懸液分人兩只 30 ml 無菌離心管,標為「 Set1」。


    15. 在組織懸液上面加 S-DMEM 至 25 ml,然后除去漂浮的脂肪或間質組織。


    16. 讓組織懸液靜置 1 min ,以便使未消化的組織沉降。


    17. 除去漂在上面的脂性物質,然后輕輕將上層懸液移人兩只離心管,標為「 Set 2」。 


    18. 讓懸液靜置 30s。


    19. 將上層懸液移人兩只離心管,標為「 Set 3」。


    20. 在懸液上面加 S-DMEM。


    21. 離心(200~300 g,4 min)


    22. 吸去上清液。


    23. 輕彈離心管底部,使聚集的隱窩分散。


    24. 重復用 S-DMEM 混懸隱窩,然后離心。S-DMEM 清洗和離心步驟須重復 5 次左右,直至上清液清澈。


    25. 應在顯微鏡下檢查 Set1 和 Set 2 離心管中的沉降組織內是否含有隱窩。如含有隱窩較多,將沉降組織搖勻,從步驟 14 開始重復沉降。如僅含有未消化組織,可將其丟棄。


    26. 上清液變清澈時,準備種植隱窩。為了使細胞生長良好,需要合適的種植密度。一般情況下,按每孔(24 孔培養板)800~1000 個/ml 密度種植時隱窩生長最好。按下列方法確定隱窩密度。
    (a) 用 10 ml 生長培養液混懸分離的隱窩,然后搖勻。
    (b) 取出 100ul,加入 900ul 生長培養液。
    (c) 從上液中取 100ul 懸液,計數隱窩。每毫升懸液的隱窩數目 = 計數的隱窩數目 X 100


    27. 在 37°C 和 7.5% C02 條件下孵育 2d,讓細胞貼壁。


    28. 從培養板吸去含有未附著細胞的培養液,換入新鮮培養液。


    29. 每隔 5 天補充 0.5 ml 新鮮培養液。                                                                  

    展開


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