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  • 發布時間:2020-08-17 22:23 原文鏈接: 羊膜細胞的培養(一)

    實驗方法原理 在標準培養箱(37°C ) 中用 Leighton 塑料管培養細胞,然后用胰蛋白酶懸浮法收集細胞。

    實驗材料 羊水標本D-PBSA秋水仙酰胺胸腺嘧啶核苷溴脫氧尿核苷胰蛋白酶EDTA Histopaque-l077

    試劑、試劑盒 完全培養液胰蛋白酶和EDTA混合液消毒劑如Virkon氯化鉀低滲溶液固定液過氧化氫溶液生理鹽水胰蛋白酶生理鹽水pH6.8的緩沖液Leishman染液

    儀器、耗材 普通容器塑料吸管和培養用移液器塑料Leighton管和蓋注射器一次性塑料移液吸管或巴斯德吸管顯微載玻片Copline缸DPX玻片封固劑和蓋玻片烘箱加熱板亮視野相差正置顯微鏡

    實驗步驟

    試管培養的建立和檢測

    1. 將約 10~15 ml 羊水用普通塑料無菌容器送到實驗室。

    2. 用帶有無菌塑料混合針的 20 ml 無菌注射器或 10 ml 吸管將樣本分入 3 個 Leighton 管中。按病入和詳細鑒別資料標記試管。如果樣本較少(5 ml 或少于 5 ml ),可用 2 個培養管培養。

    3. 離心(150 g,5 min )。

    4. 將上清液倒回原來的容器,以供生物化學分析或免疫學分析,例如 α-甲胎蛋白(AFP ) 測定,或者將上清液倒入消毒溶液(Virkon )。

    5. 在每個 Leighton 管中用 1 ml 培養液將細胞混懸。

    6. 在 37°C 條件下培養 Leighton 管內的細胞。

    7. 將細胞靜止培養 5~7 天,使細胞貼壁和建立克隆。

    8. 評估細胞生長情況。根據細胞的生長程度,添加 0.5 ml 新鮮培養液或除去培養液后加入約 1 ml 新鮮培養液。

    9. 此后,按需要每 2~4 天重新評價細胞的生長狀況,適當更換培養液,直至有足夠細胞收集。通常在培養后 7~12 天收集細胞。如果有可能,在收集細胞的前一天更換培養液。

    分散和傳代

    10. 將每個培養管加入約 1.5 ml 滅菌的 TE 液,預溫至 37°C 。

    11. 從培養管中棄去培養液,然后用 1 ml 滅菌的 TE 液浸洗 1 次。

    12. 分散細胞

    (a)將 0.2 ml TE 液加入培養管,在 37°C 條件下孵育 1~2 min,使細胞脫落。

    (b)用倒置顯微鏡檢査細胞。當細胞懸浮時,加入 1 ml 培養液,然后將培養管放回培養箱。培養液中的血清可終止 TE 液的作用。

    13. 傳代

    (a)將 0.5 ml TE 液加入培養管,在 37°C 條件下孵育 1~2 min,使細胞脫落。

    (b)用倒置顯微鏡檢查細胞。當細胞懸浮時,加入 1.2 ml 培養液,然后將細胞懸液分放入合適數目的繼代培養管。可接種 2~8 個培養管,這取決于最初的細胞密度。使每個傳代培養管中的細胞密度不等,通常是有價值的。這樣,能夠有機會以最佳細胞密度收集培養管內的細胞。

    (c)在每個傳代培養管加入新鮮培養液至 1 ml,然后培養。

    14. 第 2 天確認細胞已貼壁,然后更換培養液。

    培養管內細胞的常規收集

    只要備有其他培養細胞,可在原代細胞進行常規收集。如果只保留 1 個培養管,應在收集細胞前繼代培養,或在收集后將細胞傳代。

    15. 當準備收集細胞時,將 0.1 ml 稀釋過的秋水仙酰胺(將 1 ml 秋水仙胺酰加人到 9 ml 無菌 D-PBSA 中,作為工作液。然后,每 1 ml 細胞培養液中加入 0.1 ml 工作液,終濃度達到 0.1 μg/ml)加入到每個培養管中。

    16. 有必要將細胞培養足夠的時間,以便獲得較多呈圓形的有絲分裂細胞。典型的培養時間為 2~3 h ,但很活躍的細胞可少至半小時,緩慢生長的細胞可達 4 h 以上。

    17. 將培養液移入 Virkon 溶液,再將培養管在紙巾上傾流片刻。

    18. 加入 2 ml TE 液后,在 37°C 條件下將細胞培養 3 min,以便使細胞脫落。

    19. 當細胞懸浮時,加入 7 ml 氯化鉀低滲溶液(0.075 mol/L KCl,用 UPW 配制。將 5.574 g  Analair 氯化鉀加入 1 L 超純水中
    ),在 37°C 條件下將細胞放置 5 min。

    20. 離心(150 g,5 min )。

    21. 小心地將上清液倒入 Virkon 溶液中,然后將培養管在紙巾上傾流片刻。輕彈培養管,使細胞在剩余的少量培養液中懸浮。

    22. 用新鮮固定液(新鮮配制,將 3 份 Analar 甲醇和 1 份 Analar 冰乙酸混合)緩慢固定細胞

    (a)輕彈培養管后,滴入 1~2 ml 固定液。不斷搖晃細胞,以免細胞成簇。

    (b)加入 3~4 ml 固定液。

    23. 離心(150 g,5 min )。

    24. 將上清固定液倒入碳酸氫鈉溶液中。

    25. 輕輕混懸細胞后,加入 5 ml 固定液。

    26. 通過離心、倒掉上清固定液和再固定,更換固定液,即重復操作步驟 9~11。

    27. 將細胞離心后,倒掉上清液,用剩余的固定液混懸細胞,制備細胞涂片 (見后述的玻片制備步驟)。


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