| 實驗步驟 |
一、材料與設備
1) 脫氧核酶 (其設計與制格參見脫氧核酶相關章節)
2)5X 反應緩沖液:750Tnmol/LNaCl,200 mmol/LTris-HCl (pH8.0)
3)5X 乙酸鎂或氯化鎂:300 mmol/L
4) 無 RNA 酶的 DMA 酶
5) 切割底物 RNA
6) 無水乙醇
7) 水飽和酚
二、操作方法
1) 脫氧核酶切割底物 RNA 反應體系:加入底物 RNA(終濃度為 1~10umol/L、脫氧核酶 (終濃度為 30umol/L)、反應緩沖液 (終濃度為 15 mmol/LNaCl),4 mmol/LTris-HCl(pH8.0)
2) 于 95°C 加熱 3~4 min 從而變性 RNA 底物和脫氧核酶,然后置于冰上 5 min
3) 再于 25℃ 溫育 10 min
4) 添加 5X 反應緩沖液,使反應緩沖液的濃度達到 1X 反應緩沖液的濃度. 反應溫度提高到 37~42℃
5) 加入 5X 乙酸鎂或氯化鎂,使鎂離子濃度達到 60 mmol/L, 從而啟動脫氧核酶的切割反應。
6) 依據底物 RNA 和脫氧核酶的不同,反應時間在 30 min~4 h。
7) 反應結束,將反應管置于冰上,用乙醇沉淀回收 RNA。
8) 如果脫氧核酶千擾后續反應,可在乙醇沉淀后,用 100ul 無 RNA 酶的水溶解,再加 15ulDNA 酶,于 37℃ 反應 lh,酚抽提,乙醇沉淀,再通過變性聚丙烯酰胺凝膠分離純化。
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