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  • 發布時間:2019-05-22 13:54 原文鏈接: 腺病毒的包裝,純化和感染

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    腺病毒的包裝,純化和感染
    技術背景:Adeasy 系統利用了腺病毒具有的高感染能力,可高度濃縮等優點,
    并破壞了腺病毒基因組中的早期基因E1,使之成為較為安全、高效的病毒載體。
    利用帶有E1 基因的293 細胞作為包裝細胞,通過倍比擴增,富集病毒顆粒,并
    通過CsCl 梯度離心,透析進行分離純化。對絕大多數的細胞株可以達到近乎100
    %的感染效率。但需要指出的是Adeasy 同樣具有所有病毒載體或轉染試劑都不
    可避免的細胞毒性問題。
    所需試劑:
    ? 293 細胞;
    ? 重組好的腺病毒質粒;
    ? Pac I 限制性內切酶;
    ? 質粒回收相關試劑;
    ? 細胞培養、轉染相關試劑;
    ? TBS:10mM Tris, 0.9% NaCl, pH8.1;
    ? 40% CsCl:28.45 g CsCl 溶于42.7 ml 的TBS 中,4 度保存;
    ? 15% CsCl:9.085 g CsCl 溶于47.69 ml 的TBS 中,4 度保存;
    ? Beckman 離心管:14*89 mm,SW41 轉頭;
    ? Polybrene (sigma),10 mg/ml;
    ? 透析袋:Spectrum Co. (成卷供應,帶少量甘油,硫化物與重金屬),
    MW=8000~14400;
    ? 滅菌甘油。
    操作流程:
    1. 293 細胞(E1-transformed human embryonic kidney cells 在轉染前24 小時接種
    于1 或2 個60 mm 培養盤中,使之在轉染時細胞匯合率為50-70%;
    2. 在轉染前,用Pac I 處理目的質粒(一般一個60 mm 細胞盤需要6μg DNA)。
    處理后質粒用乙醇沉淀并重懸于20 μl 無菌水中;
    3. 用PEI 或其他轉染試劑將6 μg Pac I 處理過的質粒轉染細胞;
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    4. 8 個小時后移去混合液,加入4 ml DMEM 完全培養液(10% CBS,1%
    Pen/Strep);
    5. 在轉染后7 到10 天用細胞刮(而不是胰酶)將細胞從瓶中刮下并移入50ml
    錐形管。離心后將細胞重懸于2.0 ml PBS 或全培液中。于液氮中凍結細胞,
    37℃水浴中溶解,劇烈振蕩。此步驟共進行4 次。注意保存時不要反復凍融,
    可保存于-20℃;
    6. 將293 細胞以50-70%的匯合率鋪于60 mm 培養盤中,以30-50%的體積比加
    入含病毒上清液。在感染后2-3 天即可看到明顯的細胞裂解或CPE 現象;
    7. 在有1/3 到1/2 的細胞脫離漂浮時,通常是感染后3-5 天收集病毒。可進一
    步通過Western blot 或PCR(5 μl 病毒上清加上10 μl PCR-grade Protease K,
    55℃消化1 小時,然后煮沸樣品5 min,離心后取1-2 μl 進行PCR 反應)證
    實重組腺病毒的存在;
    8. 按步驟5 的方法收集病毒上清。在這種情況下一般至少可收集到107 infectious
    particles/ml 的病毒。每輪的擴增應能提高一個數量級的梯度;
    9. 為了進一步擴增,將步驟8 獲得的病毒上清進一步感染100 mm 培養盤的細
    胞,按步驟5 的方法收集病毒,并進而將其感染150 mm 細胞培養盤中的293
    細胞,以獲得足夠量的病毒;
    10. 將15% CsCl 和40% CsCl 加入Beckman 離心管中制備CsCl 梯度溶液;
    11. 將最終富集病毒顆粒的病毒上清滴加于CsCl 梯度溶液上;
    12. 超速離心,30000 rpm,4 度離心16 個小時;
    13. 離心后,應有兩條帶。位置較高,顏色較弱的條帶主要為腺病毒空殼,不具
    感染能力;位置較低,顏色較亮的條帶含有我們需要收集的活病毒顆粒。用
    16 號針頭將這一條帶收集;
    14. 在TBS 中透析一小時,隨后在含有10%甘油的TBS 中透析兩次,每次一小
    時;
    15. 將純化的腺病毒分裝于EP 管中;
    16. 在Eppendorf Biophotometer 中測量透析液中的總蛋白量,1μg 病毒蛋白相當
    于4×109 病毒顆粒;
    17. 長期保存于-70 度中,短期可保存于4 度,切忌反復凍溶;
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    18. 由于腺病毒對不同細胞株的感染效率存在差異,且考慮到病毒顆粒的細胞毒
    副作用,通常通過梯度感染的方法確定所需的病毒用量。以相對細胞數1:1,
    10:1,100:1,1000:1 的病毒顆粒感染靶細胞;加入相對培養液體積1:
    1000 的Polybrene。在37 度下平板離心30 分鐘;
    19. 感染8~12 小時后換液。將含有病毒的培養液小心移入含有消毒液的廢液缸
    中,加入適量全培液。
    參考文獻:
    1.Proc. Natl. Acad. Sci. USA,Vol. 95, pp. 2509–2514, March 1998,A simplified
    system for generating recombinant adenoviruses.
    2.Current Protocols in Human Genetics (2004) 12.4.1-12.4.25.

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