熒光原位雜交原理及步驟

熒光原位雜交/FISH技術服務

    熒光原位雜交FISH的原理 ：熒光原位雜交（Fluorescence in situ hybridization FISH）的基本原理是用已知的標記單鏈核酸為探針，按照堿基互補的原則，與待檢材料中未知的單鏈核酸進行特異性結合，形成可被檢測的雜交雙鏈核酸。由于DNA分子在染色體上是沿著染色體縱軸呈線性排列，因而可以將探針直接與染色體進行雜交從而將特定的基因在染色體上定位。與傳統的放射性標記原位雜交相比，熒光原位雜交具有快速、檢測信號強、雜交特性高和可以多重染色等特點，因此在分子細胞遺傳學領域受到普遍關注。

      雜交所用的探針大致可以分為三類：（1）染色體特異重復序列探針；（2）全染色體或染色體區域特異性探針；（3）特異性位置探針，由一個或幾個克隆序列組成。探針的熒光素標記可以采用直接和間接標記的方法。間接標記是采用生物系標記的dUTP(biotin-dUTP)經過缺口平移法進行標記；而直接標記法是將熒光素直接與探針核苷酸蔌磷酸戊糖骨架共價結合，或在缺口平移法標記探針時將熒光素核苷三磷酸摻入。

服務流程

一、探針及標本的變性
（1）探針變性：將探針在75℃怛溫水浴中溫育5min，立即置0℃，5～10min，使雙鏈DNA探針變性。

（2）標本變性：

①將制備好的染色體玻片標本于50℃培養箱中烤片2～3h。（經Giemsa染色的標本需預先在固定液中退色后再烤片）。

②取出玻片標本，將其浸在70～75℃的體積分數70%甲酰胺/2×SSC的變性液中變性2～3min。
③立即按順序將標本經體積分數70%、體積分數90%和體積分數100%冰乙醇系列脫水，每次5min，然后空氣干燥。
二、雜交:
將已變性或預退火的DNA探針10mL滴于已變性并脫水的玻片標本上，蓋上18×18蓋玻片，用Parafilm封片，置于源潮濕暗盒中37℃要交過夜（約15～17h）。由于雜交液較少，而且雜交溫度較高，持續時間又長，因此為了保持標本的濕潤狀態，此過程在濕盒中進行。
三、洗脫：此步驟有助于除去非特異性結合的探針，從而降低本底。
（1）雜交次日，將標本從37℃溫箱中取出，用刀片輕輕將蓋玻片揭掉。
（2）將已雜交的玻片標本放置于已預熱42～50℃的體積分數50%甲酰胺/2×SSC中洗滌3次，每次5min。
（3）在已預熱42～50℃的1×SSC中洗滌3次，每次5min。
（4）在室溫下，將玻片標本2×SSC中輕洗一下。
四、雜交信號的放大:
（1）在玻片的雜交部位加150mL封閉液I，用保鮮膜覆蓋，37℃溫育20min。
（2）去掉保鮮膜，再加150mL avidin-FITC于標本上，用保鮮膜覆蓋，37℃繼續溫育40min。
（3）取出標本，將其放入已預熱42～50℃的洗脫液中洗滌3次，每次5min。
（4）在玻片標本的雜交部位加150mL封閉液II，覆蓋保鮮膜，37℃溫育20min。
（5）去掉保鮮膜，加150mL antiavidin于標本上，覆蓋新的保鮮膜，37℃溫育40min。
（6）取出標本，將其放入已預熱42～50℃的新洗脫液中，洗滌3次，每次5min。
（7）重復步驟（1）、（2）、（3），再于2×SSC中室溫清洗一下。
（8）取出玻片，自然干燥。
（9）取200mL PI/antifade染液滴加在玻片標本上，蓋上蓋玻片。
五、封片:
  可采用不同類型的封片液。如果封片中不含有Mowiol（可使封片液產生自封閉作用），為防止蓋片與載片之間的溶液揮發，可使用指甲油將蓋片周圍封閉。封好的玻片標本可以在-20～-70℃的冰箱中的暗盒中保持數月之久。
六、熒光顯微鏡觀察FISH結果:
先在可見光源下找到具有細胞分裂相的視野，然后打開熒光激發光源，FITC的激發波長為490nm。細胞被PI染成紅色，而經FITC標記的探針的探針所在位置發出綠色熒光。由于本實驗使用的是Y染色體上的特異序列，因此在男性外周血染色體標本的雜交中呈陽性，即使在末分裂的細胞中，也可以觀察到明顯的雜交信號。照相記錄實驗結果。