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  • 發布時間:2020-04-23 22:41 原文鏈接: 蝦源性成分核酸檢測試劑盒使用說明

    說明

    物種鑒定系列中的過敏原鑒定試劑,可針對食品中過敏原成分的特異核酸片段進行擴增,通過實時擴增曲線判定結果。本產品用于食品及其原料中過敏原蝦成分的檢測,可于一個反應中同時檢測蝦與北極蝦,檢出限為0.01%。(需注意:FAM通道的檢測引物為蝦的檢測引物,對海蟹、蝦/蟹爬、虎頭蟹、赤甲蟹有非特異性擴增。VIC通道的為北極蝦的檢測引物。)

    ◆ 產品組成(96測試)

    021132LⅡ


    試劑

    含量

    A-蝦源-P

    20μL × 8管× 12排

    NG-P

     100μL × 3支

    PG-蝦源-P

     100μL × 2支

    • 適用儀器

    ABI 7500、CFX 96、Mx 3005P、LineGene9600等實時熒光PCR儀。(可同時檢測FAM通道(494 nm)、VIC通道(538nm)兩種通道的熒光定量PCR儀)。

    ◆ 自備耗材和儀器

    ①冰盒;②移液器(0.5-10μL,10-100μL,100-1000μL)及配套滅菌吸頭;③離心機;④渦旋混勻器;⑤金屬浴。

    ◆ 注意事項

    1.本試劑檢測靈敏度高。為了防止污染,實驗要分區操作。

    1)第一區:樣本制備區。

    2)第二區:模板添加區。

    3)第三區:擴增及產物分析區。

    分區之間最好進行物理性隔離,避免人為因素造成的污染。

    2.實驗過程中穿戴工作服和乳膠手套,不同區域獨立使用工具,需更換手套和實驗服。

    3.嚴格按照操作步驟操作,試劑配制和加樣等步驟請嚴格按照說明書要求在冰盒上操作。

    4.反應液中的成分對光敏感,應避光保存。試劑使用前要完全解凍,但應避免反復凍融,推薦使用前離心30秒,并按檢測頻次將反應液以適當體積分管保存。

    5.反應結束后,擴增管請置于密封袋內丟棄,當日清理,開蓋易造成氣溶膠污染,禁止開蓋。

    6.不同批號試劑請勿混合使用,在有效期內使用。

    ◆樣品處理

    參照《SN/T 1961.10-2013 出口食品過敏原成分檢測 第10部分:實時熒光PCR方法檢測蝦/蟹成分》或其他標準處理樣品,制備的樣本保存待用。

    樣品的采集和制備是過敏原成分鑒別的重要步驟,防止交叉污染的措施按照GB/T 27403中的規定執行。

    詳細步驟請按照標準操作或查閱食安通軟件。

    ◆ 實驗操作

    1.模板制備(樣本制備區)

    建議使用配套動物基因組DNA提取試劑盒,具體過程詳見產品說明書。

    2.添加模板(模板添加區,放置于冰盒上進行)

    剪下所需測試數的已含有反應液的PCR管,放置在室溫待解凍后,離心30秒后揭開封口膜,向每管反應液中分別加入5μL模板,順序為NG、待測樣品模板、PG-蝦源-P。蓋好配套的PCR管蓋后,渦旋混勻30s,離心1min,立即進行PCR擴增反應。

    3.擴增反應(擴增及產物分析區)

    使用熒光定量PCR儀,使用FAM和VIC通道。

    按下列條件設置擴增反應:

    PCR循環

    熒光收集位點



      95℃  

    30秒

    1個循環

    —

      95℃   

    15秒

    45個循環

    —

      60℃   

    40秒

    ※


    4.基線和閾值設定

    基線調整取3-15個循環的熒光信號,閾值設定原則根據儀器噪聲情況進行調整,以閾值線剛好超過正常陰性對照擴增曲線(無規則的噪音線)的最高點,且Ct值不出現任何數值為準。

    ◆結果判定

    同時進行的陰性、陽性、空白對照實驗結果正常,檢測樣品FAM與VIC通道均無熒光增幅現象,判斷樣品中未檢出致敏原蝦成分。

    同時進行的陰性、陽性、空白對照實驗結果正常,檢測樣品有明顯的熒光增幅曲線,且Ct值≤35,判斷樣品中檢出致敏原蝦成分。

    同時進行的陰性、陽性、空白對照實驗結果正常,若檢測樣品熒光增幅曲線的Ct值在35-40之間,則應重新進行實時熒光PCR反應。再次擴增后的結果Ct值仍在35-40之間,可判斷樣品中檢出致敏原蝦成分,否則可判斷樣品中未檢出過敏原蝦成分。

    FAM與VIC通道其中有一個檢測結果為陽性,即可判斷該樣品中檢出致敏原蝦成分。

    • NG反應為平滑直線,PG反應為“S”型擴增曲線,此次檢測結果有效,否則無效。


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