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  • 發布時間:2019-04-09 20:19 原文鏈接: 轉基因小鼠制備實驗

    轉基因小鼠制備實驗可應用于:(1)動物發育研究;(2)研究細胞功能調控機制。

    實驗方法原理遺傳的基本物質是DNA,基因是位于染色體上有遺傳效應的DNA片段,對于儲存在生物全套染色體中的全部遺傳信息,可稱其為基因組。不同種類、不同個體的生物基因組成是不同的,對動物個體來說,非自身的基因成分屬于外源基因,如果把外源基因整合或導入動物染色體基因中,這個外源基因就被稱為轉基因(transgene)(即轉移來的基因),這種動物就是轉基因動物。
    實驗材料

    小鼠

    試劑、試劑盒

    HCGPMSG透明質酸酶戊巴比妥鈉

    儀器、耗材

    顯微鏡鑷子持卵針注射針

    實驗步驟

    1.  選取7~8周齡雌性小鼠,陰道口封閉,作為供體,下午3:00左右,每只小鼠腹腔注射PMSG(10 IU)。
     

    2.  47~48小時后,每只小鼠腹腔注射HCG(0.8 IU),并與正常公鼠合籠;另取數只適齡母鼠(2月齡以上)作為受體,陰道口潮紅,與結扎公鼠合籠。
     

    3.  第二天上午9:00前觀察供體、受體,有精栓者拿出備用。受體籠拿出作好隔離措施。
     

    4.  10:30左右,斷頸處死供體,手術取出整個輸卵管,放入透明質酸酶~0.3 mg/M2液中。顯微鏡下,用鑷子撕開輸卵管壺腹部,受精卵隨同顆粒細胞即一同流出。
     

    5.  仔細觀察放在透明質酸酶M2液中的受精卵,當受精卵周圍的顆粒細胞脫離時,將受精卵吸出,放入M2液中洗滌,最后放在M16液中放入5% CO2,37℃培養箱培養。
     

    6.  在顯微鏡下觀察,挑選細胞飽滿,透明帶清晰,雄原核清晰可見的受精卵待用。
     

    7.  安裝持卵針和注射針,使其末端平行于載物臺,在凹玻片的中央滴入一滴M2液,覆蓋石蠟油,移入待注射的受精卵。DNA在注射針中的氣泡應在先前全部彈走。
     

    8.  在高倍鏡下,將注射針輕觸持卵管,使DNA緩慢流出并控制其流量;反復吹吸受精卵,使其處于最佳位置,將注射針刺入受精卵的雄原核,直至看到原核膨大即退出。將注射過的和未注射過的受精卵上下分開放置,不致于混攪,注射完畢后,放入5% CO2,37℃培養箱培養。
     

    9.  將受體麻醉,注射計量為1%戊巴比妥鈉0.01 ml/g,腹腔注射。手術取出卵巢連接輸卵管,用脂肪鑷固定,在顯微鏡下找到輸卵管開口。吸取注射后經培養成活的受精卵,吸取方法是先吸一段較長的M2,吸一個氣泡,然后吸取受精卵,盡量緊密排列,再吸一段液體,吸一個氣泡,再吸一段液體,共四段液體三個氣泡。除較長的那段液體,其余的液體大致1 cm左右,氣泡0.2 cm左右。將移植管口插入輸卵管口,輕輕將移植管內的液體吹入,看到輸卵管壺腹部膨大并清晰地看到三個氣泡,即移植成功。將卵巢連同輸卵管放回腹腔,縫合肌肉和皮膚。
     

    10.  受體每隔一個星期稱體重一次,當第二次比第一次稱重增加時,即可初步判斷懷孕。手術后19~21天仔鼠分娩,待仔鼠3周后,剪耳、編號,剪尾,交分子組檢測。
     

    (一般選取4-5周齡的雌鼠作為供體,此時的小鼠卵數較多,狀態較好。用pms誘導卵細胞成熟,用hcg超排。)

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    注意事項

    1.?在整個過程中,注射針尖應遠離人員和實驗室中的儀器。注射針在持針器上安裝不牢時,注射器、管子及注射針內的壓力,可能將注射針射出。


    2.注射速度過快能擾亂細胞質成分,細胞裂解或細胞從底層移位。當注射體積小于估計的細胞體積的50%,并且注射樣品的流動速度幾乎不導致可見的細胞質移位時,注射效果最好。


    3.用紫外光可看到注入標記物后的活細胞,但會對細胞造成不可恢復的損傷,因此應盡可能縮短紫外光照射時間。

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    其他

    1.最優組分依使用的特定細胞種類而有明顯的變化。如果努力優化電壓和脈沖寬度電穿孔結果仍不令人滿意,就應嘗試改變穿孔介質。


    2.影響電穿孔/電融合的另一重要因素與細胞狀態有關,為達到最高效率,必須收集對數生長中期的細胞。


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