這樣應該可以了吧
一、實驗目的:
(1)掌握SOD酶的提取、分離、檢測一般步驟。
(2)了解酶在提取過程中的兩個參數:回收率、純化倍數。
(3)掌握離心機的使用。
二、實驗原理:
鄰苯三酚在堿性條件下,能迅速自氧化,釋放出O2-,生成帶色的中間產物,中間物的積累在滯留30~45s后,與時間成線性關系,一般線性時間維持在4min的范圍內,中間物在420nm波長處有強烈光吸收。當有SOD存在時,由于它能催化O2-與H+結合生成O2和H2O2,從而阻止了中間產物的積累,因此,通過測定光吸收即可求出SOD的酶活性。
三、實驗試劑:
大蒜、冷丙酮、磷酸緩沖液(PH7.8,0.05mol/L)、氯仿-乙醇混合液、鄰苯三酚、濃鹽酸、天平、石英砂、研缽、冷凍離心機、50mL離心管 8個、紫外-可見分光光度計、250mL三角瓶8個、玻璃棒8根、試劑瓶250mL 3個、500mL 3個、250mL燒杯16個、試管帶膠塞80根、移液管各5根
四、實驗步驟:
(1)SOD提取:
稱取5g大蒜蒜瓣,加入石英砂研磨破碎細胞,加入15mL的PH7.8 0.05mol/L的磷酸緩沖液,研磨攪拌20分鐘,使SOD充分溶解,6000rpm離心,棄去沉淀,得上清液。(留出1mL備用,準確量取剩余上清液體積,記錄)
(2)除雜蛋白:
提取液加入1/4體積的氯仿-乙醇混合液攪拌10min,6000rpm離心15min去沉淀,得粗酶液。(取1mL粗酶液備用,精確測量剩余粗酶液體積)
(3)SOD酶的沉淀分離:
剩余的粗酶液中加入等體積的冷丙酮,攪拌15min,6000rpm離心15min,得到SOD酶沉淀。將沉淀先加2mL磷酸緩沖液,溶解后再加3mL混勻。6000rpm離心15min,取上清得到SOD酶液。取1mL備用,其余量取體積。
(4)粗酶液活性測定:
提取液、粗酶液、酶液中SOD活力檢測,具體步驟如下。
加入鄰苯三酚后迅速混勻,準確計時4min,加一滴濃鹽酸停止反應,420nm測吸光值。
試劑/(mL)
空白管
對照管OD1
提取液OD2
粗酶液OD2
酶液OD2
PH8.3緩沖液
3
3
3
3
3
SOD提取液
0
0
0.1
0.1
0.1
蒸餾水
2
1.8
1.7
1.7
1.7
室溫放置20min
鄰苯三酚
0
0.2
0.2
0.2
0.2
(5)溶液中可溶性蛋白含量測定:
分別從1mL備用的提取液、粗酶液、酶液各取0.3mL按以下倍數稀釋,260nm/280nm測定吸光值,按公式計算蛋白質濃度。
提取液稀釋:50 ×
粗酶液稀釋:20 ×
酶液稀釋:10 ×
五、實驗數據:
提取液
粗酶液
酶液
總體積(ml)
提取液
粗酶液
酶液
260nm吸光度值
280nm吸光度值
公式
蛋白質濃度(mg/ml)=(1.45A280- 0.74A260) ×稀釋倍數
蛋白質濃度(mg/ml)
對照管(OD1)
提取液(OD2)
粗酶液(OD2)
酶液(OD2)
420nm吸光值
六、實驗結果及數據處理:
(1)酶活力單位
提取液酶活力單位:=2(OD1-OD2)×5/0.1=
粗酶液活力單位:=2(OD1-OD2)×5/0.1=
酶液活力單位:=2(OD1-OD2)×5/0.1=
(2)總活力
提取液總活力U=活力單位×總體積=
粗酶液總活力=活力單位×總體積=
酶液總活力=活力單位×總體積=
(3)比活力
提取液酶液比活力U/mg=活力單位/蛋白質濃度=
粗酶液比活力U/mg=活力單位/蛋白質濃度=
酶液比活力U/mg=活力單位/蛋白質濃度=
(4)純化倍數
粗酶液純化倍數=粗酶液比活力/提取液比活力=
酶液純化倍數=酶液比活力/提取液比活力=
(5)回收率
粗酶液回收率=粗酶液總活力/提取液總活力=
酶液回收率=酶液總活力/提取液總活力=
七、實驗結果誤差分析:
(1)研磨和離心大概還不夠充分。
(2)由于測量儀器的精密度引起的誤差。
(3)在操作的過程中,加入鄰苯三酚后未混合均勻,可能致使化學反應進行得不很充分,這可能是造成實驗數據與預期不符的一個原因;
(4)在實驗過程中,所需化學試劑加入的量不是很準確,這可能是實驗數據出現問題的另一個原因;
(5)此外,實驗本身還很粗糙,酶的提取、分離和純化都不能十分徹底,還有很多雜蛋白干擾實驗。
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