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  • 發布時間:2020-09-07 20:59 原文鏈接: 過碘酸雪夫(PAS)染色

    實驗原理
      胞漿內存在糖原或多糖類物質(如粘多糖、粘蛋白、糖蛋白、糖脂等)中的乙二醇基(CHOH-CHOH)經過碘酸(periodicacid)氧 化,轉變為二醛基(CHO-CHO),與雪夫(Schiff)試劑中的無色品紅結合,形成紫紅色染料而沉積于細胞內多糖所在處。該反應稱為過碘酸-雪夫 (PAS)陽性反應,以前也稱為糖原染色。
    實驗方法
      材料:
      1.高碘酸氧化液:
      HIO4·2H2O1g,
      蒸餾水加至100ml。
      此液溶解后保存于冰箱中待用。
      2.Schiff試劑:
      將1g堿性品紅溶于200ml煮沸的蒸餾水中。搖蕩5分鐘,冷卻至600C左右,過濾,并向濾液中入1mol/LHCl20ml,混勻。冷至 250C時,加2g偏重亞硫酸鈉(或鉀)(Na2S2O5)。將此液置帶塞的棕色玻璃瓶中,放暗處24小時。加1g活性碳,搖動1分鐘,濾紙過濾。保存于 冰箱中。
      3.亞硫酸液
      100g/L偏重亞硫酸鈉6ml
      1mol/L鹽酸5ml
      蒸餾水100ml
      每次用前新鮮配置。
      4.20g/L甲綠
      甲綠2g
      蒸餾水加至100ml
      5.淀粉酶嚼石蠟刺激分泌唾液離心取上清液,內含淀粉酶,將麥芽糖淀粉酶0.1~1.0g溶于0.02mol/L磷酸鹽緩沖液(pH6.0)100ml中。
      方法:
      1.固定新鮮干燥的涂片用品5%乙醇固定10min,蒸餾水沖洗,待干;
      2.如涂片需要消化,可加唾液或麥芽糖淀酶,置室溫消化60min,然后用蒸餾水沖洗;
      3.10g/L高碘酸氧化15~20min,蒸餾水沖洗,待干;
      4.置雪夫染液中室溫染色30~60min;
      5.用亞硫酸溶液沖洗3次后,再用自來水沖洗2~3min,待干;
      6.20g/L甲綠復染10~20min;
      7.水洗,待干,鏡檢。
    實驗結果計算
      (1)中性粒細胞糖原含量參考標準:
      (-)胞質無顆粒
      (+)胞質呈淡紅色,無顆粒
      (++)胞質呈紅色,有少量顆粒
      (+++)胞質呈暗紅色,顆粒較密
      (++++)胞質呈紫紅色,顆粒極密
      (2)淋巴細胞系:
    大多數淋巴細胞呈陰性反應,少數為(+)的陽性反應。
      淋巴細胞糖原含量程度參考標準
      (-)胞質內無顆粒
      (+)胞質內有顆粒
      (++)有較粗紅色顆粒
      (+++)有粗大紅色顆粒
      (++++)顆粒粗大并有紅色塊狀
      (3)紅細胞系:
      幼紅細胞和紅細胞呈陰性反應
      紅細胞系列糖原含量程度參考標準
      (-)胞質無顆粒
      (+)有少數紅色顆粒
      (++)有較粗紅色顆粒或彌漫紅色
      (+++)有粗大紅色顆粒或深紅色
      (++++)有粗大紅色塊狀或紫紅色
      (4)巨核細胞:
      巨核細胞和血小板染色反應均為陽性
      巨核細胞糖原含量程度參考標準
      (-)胞質無顆粒
      (+)少量糖原包涵體
      (++)中等量糖原包涵體,定位于核膜出或分散胞質中,占胞質1/3
      (+++)大量糖原包涵體分散于胞質的1/2
      (++++)糖原包涵體充滿整個胞質
      (5)單核細胞呈陰性或陽性,顆粒細小,往往位于胞質邊緣:
      漿細胞大多呈陰性,少數為紅色顆粒陽性;
      組織細胞為陰性反應;
      巨噬細胞可呈陽性,為紅色顆粒反應。
    注意事項
      1.所用染色缸及器具應十分清潔、干燥;
      2.固定試劑不同,染色效果不同。目前較常用的有95%乙醇、純甲醇及甲醛蒸氣,其中乙醇固定后糖原顆粒明顯,各成熟粒細胞的反應有較明顯的顏色差異,易于判斷陽性反應的程度,且唾液消化后的對照標本沒有假陽性,故通常選用乙醇為固定劑;
      3.10g/L高碘酸溶液質量要保證,變黃則不能用,氧化時間要準確,否則將導致假陽性或假陰性;
      4.堿性品紅試劑對染色的影響不同品牌的堿性品紅染色效果不一,堿性品紅的質量是試驗成敗的關鍵因素之一。希夫(Schiff)染液應避光保存,無色,變紅則失效;
      5.染色后標本應及早觀察和記錄,染色后標本保存8天后,將逐漸褪色,保存時間延長,褪色更為明顯。

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