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  • 發布時間:2019-09-12 15:54 原文鏈接: 降落PCR

    • 基本方案

               

    實驗方法原理

    基于PCR原理三步驟而設置變性-退火-延伸三個溫度點。在標準反應中采用三溫度點法,雙鏈DNA在90~95℃變性,再迅速冷卻至40 ~60℃,引物退火并結合到靶序列上,然后快速升溫至70~75℃,在Taq DNA 聚合酶的作用下,使引物鏈沿模板延伸。對于較短靶基因(長度為100~300bp時)可采用二溫度點法, 除變性溫度外、退火與延伸溫度可合二為一,一般采用94℃變性,65℃左右退火與延伸(此溫度Taq DNA酶仍有較高的催化活性)。

      ①變性溫度與時間:變性溫度低,解鏈不完全是導致PCR失敗的最主要原因。一般情況下,93℃~94℃lmin足以使模板DNA變性,若低于93℃則需延長時間,但溫度不能過高,因為高溫環境對酶的活性有影響。此步若不能使靶基因模板或PCR產物完全變性,就會導致PCR失敗。

      ②退火(復性)溫度與時間:退火溫度是影響PCR特異性的較重要因素。變性后溫度快速冷卻至40℃~60℃,可使引物和模板發生結合。由于模板DNA 比引物復雜得多,引物和模板之間的碰撞結合機會遠遠高于模板互補鏈之間的碰撞。退火溫度與時間,取決于引物的長度、堿基組成及其濃度,還有靶基序列的長度。對于20個核苷酸,G+C含量約50%的引物,55℃為選擇最適退火溫度的起點較為理想。引物的復性溫度可通過以下公式幫助選擇合適的溫度:

         Tm值(解鏈溫度)=4(G+C)+2(A+T)

         復性溫度=Tm值-(5~10℃)

    在Tm值允許范圍內, 選擇較高的復性溫度可大大減少引物和模板間的非特異性結合, 提高PCR反應的特異性。復性時間一般為30~60sec,足以使引物與模板之間完全結合。

    ③延伸溫度與時間:Taq DNA聚合酶的生物學活性:

             70~80℃ 150核苷酸/S/酶分子

             70℃ 60核苷酸/S/酶分子

             55℃ 24核苷酸/S/酶分子

             高于90℃時, DNA合成幾乎不能進行。

    PCR反應的延伸溫度一般選擇在70~75℃之間,常用溫度為72℃,過高的延伸溫度不利于引物和模板的結合。PCR延伸反應的時間,可根據待擴增片段的長度而定,一般1Kb以內的DNA片段,延伸時間1min是足夠 的。3~4kb的靶序列需3~4min;擴增10Kb需延伸至15min。延伸進間過長會導致非特異性擴增帶的出現。對低濃度模板的擴增,延伸時間要稍長些。

      循環次數  循環次數決定PCR擴增程度。PCR循環次數主要取決于模板DNA的濃度。一般的循環次數選在30~40次之間,循環次數越多,非特異性產物的量亦隨之增多。

    實驗材料

    基因樣品

    試劑、試劑盒

    引物 去離子水 DNA聚合酶 緩沖液 dNTP MgSO4(可選)和DMSO(可選)

    儀器、耗材

    PCR

    實驗步驟

    1.  反應體積為50 ul。

    2.  人CD137胞膜外區基因的PCR擴增體系:CD137-pCDNA3質粒4 ul,P1,P2各0.5 umol/L,MgCl2 2 mmol/L,dNTP 0.4 mmol/L,Taq 5 U。

    3.  hIgG1Fc片段的PCR擴增體系:含人hIgG1Fc的PGEM-T質粒4 ul,P3、P4各0.4 umol/L,MgCl2 2 mmol/L,dNTP 0.4 mmol/L,Taq 5 U。

    4.  HBVDNA多聚酶基因的PCR擴增體系:

    (1)第一輪:HBVDNA模板4 ul,P5、P6各0.25 umol/L,MgCl2 1.5 mmol/L,dNTP 0.2 mmol/L,Taq 0.8 U.

    (2)第二輪:取5倍稀釋的第一輪PCR產物4 ul為模板,P7、P8各0.25 umol/L,MgCl2 1.5 mmol/L,dNTP 0.2 mmol/L,Taq 0.8 U。

    5.  分別在各滅菌PCR管加入上述各反應成分,100℃煮沸5 min,立即冰浴5 min,加入TaqDNA聚合酶,混勻,離心,PCR程序如下:

     



    6.  取 10 ul PCR 擴增產物,在2%或3%瓊脂糖凝膠上電泳,紫外燈下觀察擴增產物。

                展開           
    注意事項

    由于目標是在較早的循環中避免低Tm值配對,在TD-PCR中最好應用熱啟動技術。設計時,退火溫度的范圍應跨越15℃左右,從高于估計Tm值至少幾度到低于它10℃

    其他

    1、若無條帶:


    (1)反應體系錯誤。重新配置反應體系確保各種試劑加入的量沒有問題。


    (2)PCR程序出錯。檢測PCR儀程序是否正確。


    (3)DNA膠問題。DNA凝膠電泳時加入陽性對照。


    (4)退火溫度不合適。以2度為梯度設計梯度PCR反應優化退火溫度。


    (5)DNA模板量太少。增加DNA模板量。


    (6)引物錯誤。利用BLAST檢查引物特異性或重新設計引物。


    (7)DNA模板中存在抑制劑。確保DNA模板干凈


    (8)模板有復雜結構。加入DMSO,BSA或者甜菜堿。可嘗試遞減PCR。


    2、PCR產物量過少:


    (1)延伸時間太短。以1kb/分鐘的原則設置延伸時間。


    (2)變性時間過長。變性時間過長會導致DNA聚合酶失活。

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