取出生1-2d的乳鼠，用麻醉劑處死。在D-hanks液中取大腦并分離海馬組織，胰蛋白酶消化，獲得細胞懸液，胎盤藍染色進行死活細胞記數，將細胞以5×105/ml的密度接種于預先經L-多聚賴氨酸處理的96孔和24孔培養板,其中24孔板中預先放置有蓋玻片。細胞維持在培養液中，置入5%CO2，飽和濕度的培養箱中培養，24h后全換液，接種當天為第一天,每3d半量更換培養液一次，培養第3天時加入阿糖胞苷,終濃度為10μmol/Ｌ,以抑制神經膠質細胞的過度增殖,24ｈ后更換全部培養液繼續培養,第10天進行細胞造模，開始實驗。
也可以用PC12細胞株,常規培養
Ａβ產物誘導海馬神經細胞，建立細胞模型：
選擇Ａβ25-35片段,用三蒸水配制成100μmol?Ｌ-1,過濾,分裝,-20℃凍存;使用前老化處理并配制成所需濃度。（將Ａβ25-35溶解在DMSO中，在用DMEM稀釋，置于37℃下孵育7-14天，即為老化狀態）。
細胞模型建立:加入濃度為20μmol/L的Ａβ25-35,接觸24h,誘導建立AD細胞模型.
檢測指標:MTT LDH 凋亡 細胞內鈣離子 以及SOD等