| 實驗方法原理 | DNA酶足跡分析常用來尋找粗制品中的蛋白質,因而提供了一種在純化過程中采用的分析方法。通過改變條件,如在反應體系中加入大量的競爭性DNA,或增加反應中鹽的濃度,可抑制非特異性的DNA結合蛋白結合到標記的DNA上。 |
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| 實驗材料 | |
| 試劑、試劑盒 | 適當的限制性內切核酸酶100%乙醇及冰冷的70%乙醇TE緩沖液[α-32P] dNTP (3000?6000 Ci mmol)水溶液1O× Klenow片段緩沖液E. coli DNA聚合酶1的Klenow片段5 mmol L 4dNTP 混合液脫氧核糖核酸酶I (DNA酶I; EC3.L4.5)分析緩沖液A或B干冰DNA酶I終止緩沖液DNA酶I儲存緩沖液甲酰胺加樣緩沖液 |
| 儀器、耗材 | 10 mL 一次性塑料管硅烷化1.5 mL微量離心管可調節水浴鍋(±0. 1℃)12 in×7.5 in大小的玻璃或不銹鋼碟有蓋子的塑料微量離心管6 mm寬間隔12 mm的DNA測序膠梳平頭Hamilton注射器(29-G 用于0.4 mm膠) |
| 實驗步驟 | 1) 同基本方案中的步驟1?7制備32P單末端標記的DNA。 2) 從各稀釋度中找出能產生約50%無切口 DNA (0. 1 mg/mL)的DNA酶I濃度。建 立一個200μL的包括探針和分析緩沖液的反應體系,但不加蛋白質,如基本方案的步驟10。加入5μL稀釋的DNA酶I,輕輕混合,稍加離心。 3) 溫育2 min,如基本方案步驟18所述終止反應。乙醇沉淀,在測序膠上分析反應產物。 4) 按基本方案進行足跡反應。不同的是,用恒定體積的、已知具有所需活性的粗組分代替不同量的蛋白質。進行一組不同分析條件的實驗來尋找合適的 反應條件。 |