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  • 發布時間:2019-09-12 10:00 原文鏈接: M13噬菌體載體的克隆

               

    實驗方法原理 雖然理論上 M13 重組噬菌體所能攜帶的外源 DNA 片段沒有限制,但實際上是有限的:長片段的外源 DNA 比短片段的更易發生缺失和重排。因此如果可能,最好克隆至 M13 噬菌體的 DNA 片段不要大于 1000 堿基。而且,當用“正向”或“反向”通用測序引物進行 DNA 測序時,大片段的中心區域可能位于所能測到的區域外。
    實驗材料

    噬菌體 T4 DNA 連接酶 限制性內切核酸酶 外源 DNA 測試 DNA M13 噬菌體載體 DNA 帶有 F' 質粒的適當大腸桿菌菌株的感受態細胞 大腸桿菌 F' 鋪板菌體

    試劑、試劑盒

    ATP 乙醇 IPTG 酚 氯仿 乙酸鈉 TE X-gal

    儀器、耗材

    瓊脂糖凝膠 YT 或 LB 瓊脂平板 YT 或 LB 培養基 YT 或 LB 上層瓊脂或瓊脂糖 培養管 加熱器 冰浴 水浴

    實驗步驟

    一、材料

    1. 緩沖液和溶液

    ATP (10 mmol/L)

    乙醇

    IPTG ( 20%, m/V)

    酚: 氯仿(1:1, V/V)

    乙酸鈉(3 mol/L,pH 5.2)

    TE ( pH 7.6 和  pH 8.0)

    X-gal (2%, m/V)

    2. 酶和緩沖液

    噬菌體 T4 DNA 連接酶

    限制性內切核酸酶

    3. 凝膠

    瓊脂糖凝膠(0.8%) 懸于 1 X TBE, 含 0.5 μg/ml 溴化乙錠

    4. 核酸和寡核苷酸

    外源 DNA

    測試 DNA

    5. 培養基

    YT 或 LB 瓊脂平板

    YT 或 LB 培養基

    YT 或 LB 上層瓊脂或瓊脂糖

    6. 專用設備

    培養管(5 ml 或 15 ml, 如 Falcon 2054 或 2006, Becton Dickinson), 預冷至 0℃

    加熱器,調至 47℃

    冰浴

    水浴,調至 12~16℃ 和 42℃

    7. 載體和菌株

    M13 噬菌體載體 DNA (RF)

    帶有 F' 質粒的適當大腸桿菌菌株的感受態細胞

    大腸桿菌 F' 鋪板菌體

    二、方法

    載體 DNA 的制備

    1. 用 3~5 倍過量的適當限制酶完全消化 1~2 μg M13 噬菌體 RF DNA,設立一個含 M13 RF DNA 而無限制酶的對照。

    2. 溫育將結束時,每個反應管取少量 DNA 樣品(50 ng), 用 0.8% 瓊脂糖凝膠電泳分析消化程度。如果消化不完全(如還有可見的閉合環狀 DNA), 加入更多的限制酶并繼續溫育。

    M13 RF DNA 制品可能含有一定量的單鏈 M13 DNA, 這些 DNA 在瓊脂糖凝膠電泳時呈遷移較快的模糊條帶,由于單鏈 DNA 不能被絕大多數限制酶所切割,因而在對照和樣品中這些帶應一致。

    3. 消化完全后,酚: 氯仿抽提,然后在 0.3 mol/L 乙酸鈉(pH 5.2)存在下,用標準的乙醇沉淀方法純化 M13 DNA。然后將 DNA 以50 μg/ml 的濃度溶于 TE ( pH 8.0)。

    4. 如果需要,用小牛堿性磷酸酶或蝦堿性磷酸酶處理,使線狀載體 DNA 脫磷酸。脫磷酸反應結束后,用加熱或用蛋白酶 K 消化使堿性磷酸酶失活,然后再用酚:氯仿抽提。

    5. 用步驟 3 的方法回收線狀 M13 DNA。將脫磷酸的 DNA 以濃度為 50 μg/ml 溶于 TE ( pH 7.6)。

    用于克隆的外源 DNA 的制備

    6. 獨立的外源 DNA 限制性片段可通過適當的限制酶切和瓊脂糖凝膠電泳純化得到。制備的外源 DNA 以濃度為 50 μg/ml 溶于 TE (pH 7.6)。

    連接

    連接互補的黏性末端時,請按以下步驟 7~9。建立平末端連接反應,請看方案“在質粒載體中進行平末端片段的克隆實驗”。

    7. 在一個微量離心管(管 A ) 中,將約 50 ng 載體 DNA 和摩爾數 1~5 倍過量的目標 (外源)DNA 混合,混合體積不超過 8 μl。如果需要,加入 TE ( pH 7.6 ) 將體積調整至 7.5~8.0 μl。設立以下對照:



    8. 在所有四個反應管中(管 A~D) 各加入 1 μl 10X 連接緩沖液和 1 μl 10 mmol/L ATP。

    9. 在管 A、B 和 D 中各加入 0.5 Weiss 單位噬菌體 T4 DNA 連接酶。各管輕拍管壁數秒混合內容物。12~16℃ 連接反應 4~16 h。

    轉化

    10. 用 YT 或 LB 培養基,37℃ 持續振蕩制備過夜培養的鋪板菌體。

    11. 從 -70℃ 冰箱取一支帶有 F' 質粒的所需菌株的感受態細胞,室溫融化,置于冰上 10 min。

    12. 在 16 支預冷至 0℃ 的 5 ml 無菌培養管(Falcon 2054, Becton Dickinson) 中各加入 50~100 μl 的 F' 細菌感受態細胞。

    13. 立刻在含有感受態細胞的各培養管中分別加入連接反應產物和對照(管 A~D ) 各 0.1、1.0 和 5 μl。輕拍管壁數秒混合細菌和 DNA。冰上放置 30~40 min。另設兩個轉化對照,一個含 5 pg M13 噬菌體 RF DNA, 另一個不加 DNA。

    14. 在連接的 DNA 與感受態細胞溫育的同時,準備 16 支備含 3 ml 融化的 YT 或 LB 上層瓊脂的無菌培養管,置于 47℃ 加熱器或水浴上,直至步驟 16。

    15. 將含有感受態細菌和 DNA 的培養管移至 42℃ 水浴,溫育,立刻將培養管移回冰水浴。

    轉化細胞鋪板

    16. 在步驟 14 準備的含融化的上層瓊脂的培養管中加入 40 μl 2% X-gal, 4 μl 20%  IPTG 和 200 μl 過夜培養的大腸桿菌細胞(步驟 10), 溫和振蕩數秒混合內容物。 將各轉化細胞分別加入各培養管中,加蓋溫和顛倒三次,依次將備管中的內容物倒至作好標記的 LB 瓊脂平板,轉動平板,使菌和上層瓊脂鋪均勻。

    使上層瓊脂在瓊脂平板上完全鋪平可能有些困難,特別是第一次使用大平板(直徑 15 cm) 時。鋪板前, 先將瓊脂平板在 37℃ 預熱 30~60 min,可以減慢上層瓊脂凝固的速度(這樣轉動平板這一步就有更多的時間)。上層瓊脂溫度高于 47℃ 會殺死感受態細菌(并明顯降低轉化率)。

    17. 蓋上平板,室溫凝固 5 min, 用 Kimwipe 紙巾吸干平板蓋上的冷凝水,倒置平板,37℃ 培養。

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