一、材料準備
1. 靶細胞制備
(1)取傳代培養24~48小時對數生長期的K562,用RPMI-1640培養液洗滌2次,用10%FCS-RPMI-1640培養液調細胞濃度4×106/ml。
(2)0.5 ml K562細胞懸液加3.7~7.4MBq(100~200uCi)51Cr,5%CO2,37度孵育90分鐘,每個15分鐘振搖一次。
(3)RPMI-1640培養液洗滌3次,洗去未標記的游離51Cr。
(4)10%FCS-RPMI-1640培養液調細胞濃度1×105/ml,同時檢測細胞的51Cr標記率,一般要求標記率>0.1 cpm/cell。
(5)如暫時不用,可放置4度保存12小時。 2. 效應細胞制備:淋巴細胞分層液分離人PBMC,10%FCS-RPMI-1640培養液調細胞濃度1×107/ml 二、操作步驟
1. 加樣:取上述效應細胞和靶細胞各0.1 ml(E:T=100:1)加入96孔培養板內,3復孔。同時設自然釋放對照孔(0.1 ml 靶細胞+0.1 ml 10%FCS-RPMI-1640培養液)和最大釋放孔(0.1ml靶細胞+0.1 ml 2%SDS)。37度,5%CO2孵育4小時。 2. 測定:1000 r/min 離心培養板5分鐘,用微量移液器吸出各孔上清0.1 ml,加于計數管內,用γ計數儀測定放射活性cpm值。 3. 計算:根據下式計算51Cr自然釋放率和NK細胞毒活性 (1)51Cr自然釋放率(%)=(自然釋放孔cpm值)/(最大釋放孔cpm值)×100%
(2)NK細胞毒活性(%)=(試驗孔cpm值-自然釋放對照孔cpm值)/(最大釋放對照孔cpm值-自然釋放對照孔cpm值)×100% 展開 |