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  • 發布時間:2020-09-01 15:07 原文鏈接: RTPCR實驗方法大全(抽提RNA,RT,PCR)3

    4. 配制的溶液應盡可能的用0.1% DEPC,在37℃處理12hr以上。然后用高壓滅菌除去殘留的DEPC。不能高壓滅菌的試劑,應當用DEPC處理過的無菌雙蒸水配制,然后經 0.22μm濾膜過濾除菌。
    5. 操作人員戴一次性口罩、帽子、手套,實驗過程中手套要勤換。
    6. 設置RNA操作專用實驗室,所有器械等應為專用。
    二、常用的RNA酶抑制劑
    1. 焦磷酸二乙酯(DEPC):是一種強烈但不徹底的RNA酶抑制劑。它通過和RNA酶的活性基團組氨酸的咪唑環結合使蛋白質變性,從而抑制酶的活性。
    2. 異硫氰酸胍:目前被認為是最有效的RNA酶抑制劑,它在裂解組織的同時也使RNA酶失活。它既可破壞細胞結構使核酸從核蛋白中解離出來,又對RNA酶有強烈的變性作用。


    3. 氧釩核糖核苷復合物:由氧化釩離子和核苷形成的復合物,它和RNA酶結合形成過渡態類物質,幾乎能完全抑制RNA酶的活性。
    4. RNA酶的蛋白抑制劑(RNasin):從大鼠肝或人胎盤中提取得來的酸性糖蛋白。RNasin是RNA酶的一種非競爭性抑制劑,可以和多種RNA酶結合,使其失活。
    5. 其它:SDS、尿素、硅藻土等對RNA酶也有一定抑制作用。
    mRNA的分離與純化
    真核細胞的mRNA分子最顯著的結構特征是具有5’端帽子結構(m7G)和3’端的Poly(A)尾巴。絕大多數哺乳類動物細胞mRNA的3’端存在20-30個腺苷酸組成的 Poly(A)尾,通常用Poly(A+)表示。這種結構為真核mRNA的提取,提供了極為方便的選擇性標志,寡聚(dT)纖維素或寡聚(U)瓊脂糖親合層析分離純化mRNA的理論基礎就在于此。
    mRNA的分離方法較多,其中以寡聚(dT)-纖維素柱層析法最為有效,已成為常規方法。此法利用 mRNA 3’末端含有Poly(A+)的特點,在RNA流經寡聚(dT)纖維素柱時,在高鹽緩沖液的作用下,mRNA被特異地結合在柱上,當逐漸降低鹽的濃度時或在低鹽溶液和蒸餾水的情況下,mRNA被洗脫,經過兩次寡聚(dT)纖維柱后,即可得到較高純度的mRNA。
    寡聚(dT)纖維素柱純化mRNA

    一、試劑準備
    1.3M醋酸鈉(pH 5.2)
    2.0.1M NaOH
    3.1×上樣緩沖液:20mM Tris-HCl(pH 7.6);0.5M NaCl;1M EDTA(pH 8.0);0.1%SLS(十二烷基氨酸鈉。配制時可先配制Tris-HCl(pH 7.6)、NaCl、EDTA(pH 8.0)的母液,經高壓消毒后按各成分確切含量,經混合后再高壓消毒,冷卻至65℃時,加入經65℃溫育(30min)的10%SLS至終濃度為 0.1%。
    4.洗脫緩沖液:10mM Tris-HCl(pH 7.6);1mM EDTA(pH 8.0);0.05% SDS
    5.無水乙醇、70%乙醇
    6.DEPC
    二、操作步驟
    1.將0.5-1.0g寡聚(dT)-纖維懸浮于0.1M的NaOH溶液中。
    2.用DEPC處理的1ml注射器或適當的吸管,將寡聚(dT)-纖維素裝柱0.5-1ml,用3倍柱床體積的DEPC H2O洗柱。
    3.使用1×上樣緩沖液洗柱,直至洗出液pH值小于8.0。
    4.將RNA溶解于DEPC H2O中,在65℃中溫育10min左右,冷卻至室溫后加入等體2×上樣緩沖液,混勻后上柱,立即收集流出液。當RNA上樣液全部進入柱床后,再用1×上樣緩沖液洗柱,繼續收集流出液。
    5.將所有流出液于65℃加熱5min,冷卻至室溫后再次上柱,收集流出液。
    6.用5-10倍柱床體積的 1×上樣緩沖液洗柱,每管1ml分部收集,OD260測定RNA含量。前部分收集管中流出液的OD260值很高,其內含物為無Poly(A)尾的RNA。后部分收集管中流出液的OD260值很低或無吸收。
    7.用2-3倍柱容積的洗脫緩沖液洗脫Poly(A+)RNA,分部收集,每部分為1/3-1 /2柱體積。


    8.OD260測定Poly(A+)RNA分布,合并含Poly(A+)RNA的收集管,加入1/10體積3M NaAc(pH5.2)、2.5倍體積的預冷無水乙醇,混勻,-20℃放置30min。
    9.4℃離心,10000g×15min,小心吸棄上清。用70%乙醇洗滌沉淀。[注意:此時Poly(A+)RNA的沉淀往往看不到]。4℃離心,10000g×5min,棄上清,室溫晾干。
    10. 用適量的DEPC H2O溶解RNA。
    三、注意事項
    1.整個實驗過程必須防止Rnase的污染。
    2.步驟(4)中將RNA溶液置 65℃中溫育然后冷卻至室溫再上樣的目的有兩個,一個是破壞RNA的二級結構,尤其是mRNA Poly(A+)尾處的二級結構,使Poly(A+)尾充分暴露,從而提高Poly(A+)RNA的回收率;另一個目的是能解離mRNA與rRNA的結合,否則會導致rRNA的污染。所以此步驟不能省略。
    3.十二烷基肌氨酸鈉鹽在18℃以下溶解度下降,會阻礙柱內液體流動,若室溫低于18℃最好用LiCl替代NaCl。


    4.寡聚(dT)-纖維素柱可在4℃貯存,反復使用。每次使用前應該依次用NaOH、滅菌 ddH2O、上樣緩沖液洗柱。
    5.一般而言,107哺乳動物培養細胞能提取1-5μg Poly(A+)RNA,約相當于上柱總RNA量的1%-2%。
    RNA酶保護試驗((RNase Protection Assay,RPA)是通過液相雜交的方式,用反義RNA探針與樣品雜交,以檢測RNA表達的技術。與Northern雜交和RT-PCR比較,RPA有以下幾個優點:
    1. 檢測靈敏度比Northern雜交高。由于Northern雜交步驟中轉膜和洗膜都將造成樣品和探針的損失,使靈敏度下降,而RPA將所有雜交體系進行電泳,故損失小,提高了靈敏度。
    2. 由于PCR擴增過程中效率不均一和反應“平臺”問題,基于PCR產物量進行分析所得數據的可靠性將下降,而RPA沒有擴增過程,因此,分析的數據真實性較高。


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