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  • 發布時間:2019-03-27 16:39 原文鏈接: mRNA的提取及純化實驗——磁珠法

    真核細胞的mRAN是單順反子,其最顯著的特征是具有5‘'端帽子結構和3'端的poly A的結構,此poly A結構為mRNA的提取提供了有效的途徑。

    實驗材料

    mRNA

    試劑、試劑盒

    mRNA分離試劑盒異丙醇NaAC

    儀器、耗材

    儀器水浴離心機取液器分光光度計

    實驗步驟

    一、生物素標記的Oligo(dT)探針與mRNA的煺火


    1.  在DEPC處理過的1.5 ml Eppendof管中,加入0.2-1 mg 的總RNA和無RNase的水至終體積為0.5 ml。


    2.  65℃加熱10 min。


    3.  加入2 μl 生物素標記的Oligo(dT)探針和12 μl 的20×SSC于RNA中輕輕混勻,室溫放置,逐漸冷卻平衡至室溫,此步操作一般需10 min。

     

    二、親和素順磁磁珠(SA-PMPS)的沖洗


    1.  將SA-PMPS輕晃開后,放入磁性分離架中,使SA-PMPS集中于試管一則(約30秒), 小心去除上清(不用離心方法)用1.5 ml 0.5×SSC漂洗SA-PMPS,用磁性分離架集中磁珠, 去除上清,漂洗3次。


    2.  將漂洗過的SA-PMPS重新懸浮于0.2 ml 0.5×SSC中。 雜交體的生成及漂洗。


    3.  將上步“3”中褪火的生物素標記的Oligo(dT)探針,全部加到上步“5”管中,輕輕混勻,室溫放置10 min。每隔2分鐘輕輕混勻一次。


    4.  用磁性分離架捕獲磁珠,吸棄上清。


    5.  用0.3 ml 0.1×SSC漂洗SA-PMPS,用磁性分離架集中磁珠,吸棄上清,漂洗4次。

     

    三、洗滌收集mRNA


    1.  將漂洗過的SA-PMPS重新懸浮于0.2 ml DEPC水中。


    2.  用磁性分離架捕獲磁珠,將洗脫的水相吸至一新管中。重復洗滌一次,吸取水相,兩次水相合并(約0.25 ml)


    3.  在洗脫液中加入0.1體積的NaAC,1體積的異丙醇,-20℃沉淀過夜,12 000 g 離心10 min,75%乙醇洗沉淀,真空干燥。


    4.  提取mRNA質量的分光光度計檢測,將所提mRAN分別在260,280 nm 比色,要求A.  OD260%/ OD280%不小于2.0及40 μg 所提樣品在OD260%的值為1 。


    5.  提取mRNA質量的電泳檢測,在1%的變性膠上,EB染色后,mRNA應在0.5-8 Kb 間均勻著色,1.5-2 Kb 間著色較強。


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