五、細胞培養和刺激的基本方法
細胞活化的最終結果是產生細胞因子,根據檢測指標和標本的不同,研究人員需要選擇不同的刺激劑和刺激時間,以獲得最佳的實驗結果。下表提供了檢測一些常用細胞因子的推薦的活化方法。
表1、細胞內細胞因子流式檢測推薦的陽性對照活化方法
檢測細胞因子 | 陽性對照刺激方法 |
人IFN-g | 方法2 (4-24 小時) |
人TIMP-1 | 方法5 |
人aTNF- | 方法7 (6 小時) |
人IL-1a | 方法3 (6 小時) |
人bIL-1 | 方法3 (24 小時) |
人IL-2 | 方法2 (4-24 小時) |
人IL-4 | 方法4 |
人IL-5 | 方法1 |
人IL-6 | 單核細胞:方法3 (6-12 小時) T細胞:方法6 |
人IL-10 | 方法1 |
人IL-12 | 方法8 |
人IL-15 | 方法3 |
人Fractalkine/CX3CL1 | 方法1 |
人IL-8/CXCL8 | 方法3 (24 小時) |
人MCP-1/CCL2 | 方法3 (24 小時) |
人MIP-1a/CCL3 | 方法3 (24 小時) |
人MIP-1b/CCL4 | 方法3 (24 小時) |
人RANTES/CCL5 | 方法1 |
小鼠IL-2 | 方法9 |
小鼠IL-4 | 方法10 |
小鼠IL-5 | 方法10 |
小鼠IL-6 | 方法11 |
小鼠gIFN | 方法9 or 方法12 |
小鼠aTNF- | 方法9 |
為防止細胞內細胞因子分泌到胞外,在培養的最后4-6個小時,需要使用蛋白轉運抑制劑(如3uM monensin,10mg/ml的BFA)
方法1:只使用轉染細胞檢測
方法2:人的PBMCs使用PMA (10 ng/ml) 和Ionomycin (1 uM) 刺激4-24 小時.
方法3:人的PBMC 使用LPS (0.5 - 1 ug/ml) 刺激24 小時.
方法4:人的PBMCs或者純化的CD4+細胞在包被人CD3抗體的培養板中,使用含有重組人的IL-2(10 ng/ml,目錄號202-IL-010)和IL-4(10 ng/ml,目錄號204-IL-005)的培養基培養兩天;細胞洗滌后在含有重組人IL-2和IL-4的培養基中繼續培養2天;最后收獲細胞,使用PMA(10 ng/ml) 和Ionomycin (1 uM)刺激6小時20mL于Falcon管中,加入100mL激活后的全血(細胞濃度維持在2×106/mL) 混勻,室溫暗處孵育15分鐘;
方法5: CD4 T 細胞使用PHA (10 ng/ml) 刺激4 days
方法6: T 細胞使用抗CD3 的單抗、抗CD28的單抗和重組人的IL-1b (Lorre, et al., 1994, Clin Immuno Immunopath 70:1)
方法7: 使用PMA (50 ng/ml) 和Ionomycin (500 ng/ml)刺激
(10 ng/ml,目錄號285-IF-100) 刺激2 小時,然后使用IFN(10 ng/ml) LPS(1 ug/ml)刺激22小時或者使用相同的方法刺激THP-1 細胞.g方法8: PBMCs細胞使用重組人IFN
方法9: EL4 在包被抗小鼠CD3抗體(25 ug/ml)的培養板中,使用抗CD28抗體(2 ug/ml) PMA(5ng/ml) Ionomycin(500 ng/ml) 刺激6小時
方法10:CD4+T細胞在包被小鼠CD3(25ug/ ml)抗體的培養板中,使用含有抗小鼠的CD28(2 ug/ml)的抗體,重組小鼠的IL-2(10 ng/ml,目錄號402-ML-020)和IL-4(50 ng/ml,目錄號404-ML-005)的培養基培養兩天;然后在含有重組小鼠IL-2和IL-4的培養基中繼續培養3天;最后收獲細胞,使用PMA(5 ng/ml)、Ionomycin(500 ng/ml)和monensin刺激6小時。
方法11: 小鼠ip巨噬細胞使用Mouse ip 1 ug/ml LPS 刺激24小時
方法12: 小鼠脾細胞使用PMA(5 ng/ml)和Ionomycin(500 ng/ml)刺激6小時
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