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  • 發布時間:2022-07-15 10:53 原文鏈接: transwell實驗染色后可以放多久

    最好是24小時。
    實驗前將保存在-20℃的基質膠轉移至4℃冰箱融化過夜,使用前用無血清培養基按培養基:基質膠=2:1的比例稀釋;接種前將24孔板和Transwell小室用1×PBS浸泡5min濕潤小室。用胰蛋白酶消化細胞后,用無血清培養液洗滌細胞,用含有1%FBS的培養基重懸細胞計數。培養24h后(侵襲實驗培養48h后),每孔加入1mL4%溶液,室溫固定10min;染色:吸去固定液,用1×PBS洗滌一次,每孔加入1mL0.5%結晶紫溶液,染色30min后用1×PBS洗三次,晾干;觀察:用棉簽小心擦去Transwell小室內沒有遷移的細胞,置于200×顯微鏡下觀察,計數每個視野中的細胞數。
    將小室放入培養板時,要注意不要有氣泡產生,因為一旦有氣泡,下層培養液的趨化作用就減弱了。用棉簽小心擦去Transwell小室內沒有遷移的細胞時,不能碰到已經穿膜的細胞。難穿膜的細胞可以用無血清培養基饑餓處理12-24h。

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