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  • 發布時間:2020-05-18 18:49 原文鏈接: 一小時DDA鑒定DIA定量4000個Hela蛋白(一)

    引言

    數據非依賴性的掃描模式(data-independent acquisition, DIA)是近幾年來發展的一種新的質譜數據采集方式[1]。它的理念是用二級碎片離子進行蛋白相對/絕對定量。 DIA 掃描模式中,超高分辨質譜對特定質量范圍內的所有母離子進行碎裂,采集所有母離子的碎片離子,并快速地依次掃描相鄰的母離子寬口內的所有碎片離子。 DIA 的數據中包含了所有碎片離子的保留時間和強度信息。用非常小的質量偏差寬口(如 10 ppm)目標性地抽提同一肽段的多個子離子,計算子離子的強度,就能對該肽段進行鑒定和定量。 DIA 定量相比傳統的基于母離子強度的 DDA 定量有選擇性好,定量準確等優點[1],所以 DIA 成為定量蛋白組學新的發展方向。

    Q Exactive HF 是賽默飛世爾科技在 2014 年的 ASMS 上推出的全新靜電場軌道阱超高分辨質譜儀(圖 1)[2,3]。 Q Exactive HF 采用了分段式四極桿技術(Advanced Quadrupole Technology, AQT)使離子傳輸效率至少提高了 2 倍;超高場 Orbitrap 技術,提高了Orbitrap 掃描速度,在 15000 分辨率時,二級譜圖的掃描速度是20 Hz。這兩項技術提高了 QE HF 進行 DDA、 DIA 數據的采集能力。本文用 1 小時快速色譜梯度對 QE HF 的 DDA 鑒定能力和 DIA定量能力進行考察,同時從定量肽段數目和 CV 兩方面對 DDA 定量和 DIA 定量能力進行比較。

    實驗條件

    實驗材料和方法

    Pierce HeLa Protein Digest Standard(貨號: 88329),稀釋至500 ng/μl, EASY-nLC 進樣 1μl, 500 ng進行 DDA、 DIA 數據采集,每種采集模式重復 3 遍。

    高效液相色譜分離

    高效液相色譜儀: EASY-nLC 1000 (Thermo ScientificTM)
    分析柱:實驗室自制 C18, 15 cm, ID 75 μm, 3 μm
    流動相: A: 0.1% 甲酸水溶液; B: 0.1% 甲酸乙腈溶液
    梯度: 60 min, 3/0 – 6/2 – 22/48 – 40/53 – 80/55 – 80/60(%B/min)
    流速: 300 nL/min

    質譜分析

    DDA 數據采集:

    質譜儀: Q Exactive HF (Thermo ScientificTM);
    離子源: NanoFlex 離子源;離子模式:正離子;
    噴霧電壓: 1.8 kV;毛細管溫度: 275° C; S-Lens RF: 55%;
    分辨率:一級 120000@m/z 200,二級 15000@m/z 200;一級
    AGC: 3e6, Maximum IT: 50ms;
    碰撞能量: NCE 27%; Fixed first mass: 110 m/z

    DIA數據采集:

    質譜儀: Q Exactive HF (Thermo ScientificTM);
    離子源: NanoFlex 離子源;離子模式:正離子;
    噴霧電壓: 1.8 kV;毛細管溫度: 275℃; S-Lens RF: 55%;
    目標 m/z 窗口: 400–1000; isolation window: 12Da;
    碰撞能量: 27%; fixed first mass: 200 m/z; AGC target: 1e6;
    Maximum ion injection time: atuo; loop count: 50

    數據處理

    Proteome Discoverer 蛋白鑒定流程:人蛋白數據庫(uniprot human_201309),母離子質量偏差: 10 ppm;碎片離子質量偏差: 0.02 Da;固定修飾:半胱氨酸烷基化(+57.021 Da);動態修飾:甲硫氨酸氧化(+15.995 Da);天冬酰胺和谷氨酰胺脫氨基化(+0.984 Da);酶: trypsin;漏切位點: 2; FDR< 0.01

    Skyline DDA、 DIA 蛋白定量流程: DDA 定量用 skyline MS1 filtering 功能,對每個肽段強度最高的 3 個母離子同位素峰進行抽提, idotp ≥ 0.8; DIA 定量用 skyline DIA 功能,設置隔離窗口 12 Da,對給個肽段強度最高的 5 個子離子進行峰抽提, mProphet 打分,控制 FDR < 0.01。

    實驗結果

    1. DIA 數據采集以及分析流程

    圖 1. DDA 定量和 DIA 定量實驗流程

    500 ng Hela 細胞裂解液進行 3 次 1 h 梯度 DDA 分析, Proteome Discoverer 1.4 數據庫檢索。將鑒定到的蛋白和肽段信息導入 skyline作為候選定量蛋白和肽段。基于母離子的定量用 skyline 中 MS1 filtering 功能對DDA 數據進行母離子強度抽提。 500 ng Hela 細胞裂解液進行 3 次目標 m/z 窗口 400–1000,隔離窗口 12 Da 的 DIA 分析。基于二級子離子的定量用 skyline DIA 功能對子離子進行峰抽提, mProphet 打分,篩選 Q value < 0.01 的肽段為定量肽段。

    在分析 DIA 數據之前,需要建立譜圖庫,譜圖庫中包含所有蛋白在質譜中鑒定到的肽段,以及肽段的保留時間、碎片離子質荷比、碎片離子強度等信息。數據依賴性掃描是最好的建立譜圖庫的數據采集方式。 500 ng Hela 細胞裂解液進行三次DDA 數據采集。原始數據經 Proteome Discoverer 檢索并控制FDR < 1%。將三次 DDA 鑒定結果合并,導入 skyline 建立譜圖庫。 DDA 數據除了能給出蛋白和肽段的鑒定信息,還能基于母離子的強度/峰面積進行定量。 Skyline 中 MS1 filtering 功能對母離子的多個同位素峰進行抽提,并且根據同位素分布進行打分(idotp 值)[4]。 Idotp 代表測定的同位分布和理論同位素分布的相似度。篩選 idotp 值大于 0.8 的母離子作為可信的定量肽段。

    500 ng Hela 細胞裂解液用相同的色譜柱,相同的色譜梯度,將 QE HF 切換至 DIA 掃描模式進行 3 次 DIA 數據采集。在一次掃描循環中,目標母離子質核比范圍 400–1000,四極桿的隔離窗口為 12 Da,包含 50 次 MS/MS 掃描。每一張 MS/MS譜圖中包含了 12 Da 窗口內的所有母離子的碎片離子信息。 QEHF 使用了超高場的 Orbitrap,掃描速度是 20 Hz,所以每次循環所用的時間約為 2.4–3 s,與色譜兼容(圖 2)。 Skyline 處理DIA 數據時從譜圖庫中選取強度最高的多個碎片離子進行色譜峰抽提。


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