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  • 發布時間:2019-09-13 13:25 原文鏈接: 固相化pH梯度雙向凝膠電泳實驗

    • 方案1 雙向凝膠電泳鼠肝蛋白質提取物的制備實驗

    • 方案2 雙向凝膠電泳真核生物細胞裂解物的制備實驗

    • 方案3 雙向凝膠電泳大腸桿菌裂解液的制備實驗

    • 方案4 雙向凝膠電泳腦脊液蛋白樣品的制備實驗

    • 方案5 第一向:蛋白質的等電聚焦電泳實驗

    • 方案6 垂直 SDS 平板凝膠的制備:均一凝膠的灌制實驗

    • 方案7 垂直SDS 平板凝膠制備:同時灌制多梯度凝膠實驗

    • 方案9 第二向:蛋白質的 SDS-PAGE 實驗

    • 方案10 膠體考馬斯亮藍染色實驗

    • 方案11 銀氨染色

    • 方案12 與質譜兼容的銀染法實驗

    • 方案13 用 SYPRO Ruby 進行熒光染色

    • 方案14 用 GelCode 磷蛋白染色試劑盒對磷蛋白進行染色實驗

    • 方案15 雙向凝膠的槽式轉移實驗

    • 方案16 雙向凝膠的半干印跡實驗

    • 方案17 用麗春紅 S 染色膜上的蛋白質

    • 方案18 用考馬斯亮藍 R250 染色膜上的蛋白質

    • 方案19 用印度墨水染色膜上的蛋白質

    • 方案20 用膠體金染色膜上的蛋白質

               

    實驗方法原理 肝與其他動物組織一樣,可制備用作雙向電泳的材料。離心之后,溶于合適的溶液中即可。不需要濃縮蛋白質或去除干擾物質等額外步驟。所用抽提溶液包括脲、硫脲和酰胺烷基硫代甜采堿去垢劑ASB-14,它們配合使用可最大量地溶解蛋白質。
    實驗材料

    鼠肝

    試劑、試劑盒

    二硫蘇糖醇(DTT) 抽提溶液 苯甲基硫酰氟(PMSF)

    儀器、耗材

    液氮 低溫離心機 研缽和研杵

    實驗步驟

    1.取一些肝放入研缽中,如果事先沒有被冰凍,可用液氮充滿研缽來保持肝冰凍。用研杵將肝破碎成小塊。

    2.稱量冰凍肝的小塊 10~40 mg,將其轉移至在冰上放置的離心小管中。操作應迅速以盡可能減少肝樣品的解凍。將剩余的肝儲存在一 80°C。

    3.在有肝樣品的離心管中,每 40 mg 肝加入 1ml 冷的抽提溶液。每 1ml 抽提溶液加 100 mmol/L PMSF。

    4.用小研杵(其大小適合在離心管中使用)磨碎肝樣品。

    5.每 1ml 抽提物中加 50ul 1.2mol/L DTT,振蕩。

    6.在 4°C 對樣品進行最大速度離心,lOmin。

    7.檢測上清的蛋白質濃度。

    8.將上清分成每 100ul —份。若不立即用于 IEF,將其儲存在一 80°C(樣品只能凍融一次,以避免多次凍融造成的不利影響)。

    9.按照方案 5 進行第一向 IEF。

    進行第一向 IEF 時,以鼠肝為例,濃度應為 5~lOmg/ml。對第一向 IEF,樣品可在包含 7mol/L 脲、2mol/L 硫脲、20 g/LASB-14 的水化液中被稀釋成準確濃度。但是,若在水化的同時上樣,IEF 膠條可負載相當大體積的樣品。最適水化溶液可根據蛋白質來源和經驗而靈活決定。

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