實驗方法原理
實驗材料 感興趣的細胞或組織
試劑、試劑盒 糖原EDTA緩沖液SDSBSATween 20連接子T4 DNA 連接酶BsmFIPC8SeeDNA乙酸鈉乙醇DMSOPCR引物乙酸銨DNA ladder 聚丙烯酰胺 TBE凝膠DNA參照pZErO-1 質粒TE緩沖SOC培養液Tris · Cl
儀器、耗材 微量離心管水浴鍋帶冷凍的熱控制 循環儀96 孔 PCR 板干冰 甲醇浴臺式離心機平臺型搖床UV 盒濾鏡Spin-X 離心過濾管微電擊杯Bio-Rad 基因脈沖電轉裝置培養管
實驗步驟
實驗所需「材料」、「試劑」、「耗材」具體見「其他」
1. 刮取細胞時準備 Dynabeads ,洗滌緩沖液和 5×第一鏈緩沖液混合液(置于冰上)。
2. 充分懸起 Dynabeads oligo (dT)25,轉移 100 ul 到一個無 RNase 的硅烷化微量離心管里,置于磁座上。30 s 后去除上清,不要擾動磁珠。
3. 輕彈或輕輕渦旋把磁珠重懸于 500 ul 裂解/結合緩沖液中。把磁珠留在緩沖液里直到準備把它加到細胞裂解液里。加到細胞裂解液里前移出磁珠。
4. 在一個 2 ml 的微量離心管里用 1ml 的裂解/結合緩沖液裂解 100 000 ~ 1000 000 個細胞(或 2~10 mg的組織),用組織勻漿器勻漿 1 min。如果有必要的話,最高速離心 1 min 去除細胞殘渣。使用勻漿器前,徹底清洗,再用 100% 的乙醇淋洗,用 1L 的 DEPC 處理的雙蒸水洗滌。
5. 立刻用一個 1 ml 的注射器使裂解液通過一個 23-G 的針頭撕裂基因組 DNA 。把洗過的磁珠和裂解液混合,室溫用手連續晃動溫育 3~5 min。
6. 把管子放到磁座上 2 min,棄掉上清(上清可以保存用作 DNA 的實驗)。
7. 用一個 P200 帶濾芯的吸頭上下吹吸洗滌磁珠。按下面的順序洗滌:
7.1 1 ml 含20 ug/ml 糖原的洗滌緩沖液 A(1 ml 洗滌緩沖液中加入 1 ug 20 mg/ml 的糖原),兩次。
7.2 1 ml 含20 ug/ml 的糖原的洗滌緩沖液 B, —次。
7.3 200 ul 1× 第一鏈緩沖液混合液(用 DEPC 水從試劑盒中的 5× 第一鏈緩沖液混合液稀釋),4次。
8. 把磁珠重懸于下面的第一鏈合成混合液里:
54 ul DEPC ddH2O
18 ul 5× 第一鏈緩沖液
9 ul 0.1 mol/L DTT
4.5 ul 10 mmol/L dNTP
把管子置于 37°C 2 min, 然后加入 3 ul 200 U/ul SuperScript II 逆轉錄酶。37°C 溫育 1 h, 每 10 min 用手混勻磁珠。把管子置于冰上中止反應。
9. 在冰上往第一鏈的反應里加入如下第二鏈合成的成分,次序如下:
227 ul ddH2O, 預冷
150 ul 5× 第二鏈緩沖液
15 ul 10 mmol/L dNTP
3 ul 10 U/ul E.coli DNA 連接酶
12 ul 10 U/ul E.coli DNA 聚合酶 I
3 ul2 U/ul E.coli RNase H
16°C 溫育 2 h, 每 10 min 用手混勻磁珠。
10. 溫育后,把管子置于冰上加入 100 ml 0.2 mol/L EDTA 中止反應。
11. 用含 0.1% SDS 和 2× 乙酰化 的 BSA 的 1×BW 緩沖液洗一次( 如果不加 BSA ,珠子會變得很黏)。
12. 用 500 ul 含 2×BSA 的 1XBW 緩沖液洗 3 次。重懸在 500 ul 含 2×BSA 的 1×BW 緩沖液中,70°C 加熱 20 min 失活 Poll 的核酸酶活力。
13. 用 500 ul 含 2×BSA 的 1×BW 緩沖液洗 3 次。然后用 200 含 2×BSA 的 1×NEB 緩沖液4 (隨 NlaⅢ 提供)洗 2 次(第一次用 NEB 緩沖液/ BSA 洗完后轉移到一個新管里)。取 5 ul 最后的磁珠懸液,用已知存在于所要建庫 cDNA 中的基因引物,PCR 檢查 cDNA 的完整性
14. 把磁珠重懸于下面的混合液中:
171 ul LoTE 緩沖液
4 ul 100×BSA
420 ul 10×NEB 緩沖液 4
5 ul NlaⅢ
37°C 溫育 1 h。
15. 溫育后,把管子置于磁座上約 30 S,然后用下面的溶液和 P200 帶濾芯的吸頭上下吹吸幾次洗滌:
500 ul 含 1% Tween 20 和 2×BSA 的 1×BW 緩沖液,2 次
500 ul 含 2×BSA 的 1×BW 緩沖液,4 次
200 ul 1×T4 DNA 連接酶緩沖液,2 次
最后重懸于連接酶緩沖液后,每個樣品轉移 100 ul 到 2 個新的硅烷化的微量離心管里。
16. 移棄最后的洗滌液,珠子重懸在下面的溶液里:
5 ul LoTE 緩沖液(兩管)
2 ul 5×T4 DNA 連接酶緩沖液(兩管)
3 ul 2 ng/ul 連接子 1A,B (已復性的;管 1)
3 ul 2 ng/ul 連接子 2A,B (已復性的;管 2)
17. 50°C 加熱管子 2 min 后置于室溫 5~10 min。每管中加入 1 ul 5 U/ul 高濃度 T4 DNA 連接酶,16°C 溫育 2 h。間歇混勻。
18. 連接后,置于磁座上約 30 s,然后每個樣品用 500 ul 含 0.1 % SDS 和 2×乙酰化的 BSA 的 1×BW 緩沖液洗兩次(第一次洗后合并管 1 和管 2,以減少后續步驟的損失)。
19. 用 500 ul 含 2×BSA 的 1×BW 緩沖液洗 4 次 ; 用 200 ul 含 2×BSA 的 1×NEB 緩沖液 4 洗兩次(第一次用 NEB 緩沖液/BSA 洗后,轉移到一個新的管里)。
20. 65°C 預熱下面的混合液 2,重懸起磁珠:
170 ul LoTE 緩沖液
4 ul 100×BSA
20 ul 10×NEB 緩沖液 4
2 ul BsmIII
65℃ 溫育 1 h,間歇混勻。
21. 溫育后,最高速離心 2 min, 然后轉移上清到一個新的 1.5 ml 的微量離心管。用 40 ul LoTE 緩沖液洗一次,最后終體積為 240 ml。
22. 用 240 ul PC8 抽提,用 4 ul SeeDNA 乙醇沉淀:
22.1 加入 4 ul SeeDNA [或 4 ul 3:1 (V/V) 的糖原和 SeeDNA 混合物]
22.2 加入 0.1 倍體積 3 mol/L 乙酸鈉(24 ul), 混勻
22.3 加入 2 倍體積的 100% 乙醇(480 ul), 混勻
22.4 室溫溫育 2 min
22.5 最高速離心 5 min
22.6 70% 的乙醇洗兩次,最后一次洗完后再離心一次,用吸頭小心地移出并棄去殘余液體,重懸于 10 ul LoTE 緩沖液。
23. 加入下面的混合液:
30. 5 ul ddH2O
5 ul 10×Klenow 緩沖液(或 Roche 緩沖液 H)
2.5 ul 10 mmol/L dNTP
1 ul 100×BSA
1 ul Klenow
37°C 溫育 30 min 后,加入 190 ul LoTE 緩沖液(240 ul 終體積)。
24. 用等體積(240 ul) 的 PC8 抽提。轉移 200 ul 到一個連接酶「+」的管里,余下的 40 ul 到連接酶「-」的管里。
25. 用 2 ul SeeDNA、0.1 倍體積乙酸鈉和 2 倍體積的 100% 乙醇沉淀。70% 乙醇洗兩次,最后一次洗完后再離心一次,用吸頭小心移去殘余液體,晾干 5~10 min。重 懸于 2 ul LoTE 緩沖液。
26. 準備 2× 連接酶「+」混合液:
2.5 ul 3 mmol/L Tris·Cl, pH 7.5
3.0 ul 5×T4 DNA 連接酶緩沖液
2.0 ul 5 U/ul 的高濃度 T4 DNA 連接酶
準備 2×連接酶「-」混合液:4.5 ul 3 mmol/L Tris ·Cl, pH 7.5 和 3.0 ul 5× T4 DNA 連接酶緩沖液。加入 2 ul 合適的混合液到+/- 連接酶樣品里,在熱循環儀上 16°C 過夜(8~12 h)。
27. 連接后,加入 98 ul LoTE 緩沖液,優化 PCR 條件,然后進行大規模的 PCR 擴增。
28. 準備大規模 PCR 的反應混合液(2~3 個 96 孔板,每孔 50 ul 反應液),每個反應的成分如下:
5 ul 10×SAGE PCR 擴增緩沖液
3 ul DMSO
4.0~10 ul 10 mmol/L dNTP
1 ul 350 ng/ul PCR 引物 1
1 ul 350 ng/ul PCR 引物 2
用 ddH2O 調整體積到 49 ul
0.7 ul 5 U/ul Platinum Taq DNA 聚合酶
每孔分裝入 49 ul 反應混合液,然后加入 1 ul 適當稀釋的模板。
29. 熱循環儀運行如下程序:
1 輪:
2 min 94°C
26~32 輪:
30 s 94°C(變性)
1 min 55°C(復性)
1 min 70°C(延伸)
1 輪:
5 min 70°C(終產物延伸)
連接酶「-」的樣品應當擴增 35 輪。
不要對 Platinum Taq DNA 聚合酶使用傳統的熱啟動 PCR。
30. 把 PCR 反應物混合到一個 50 ml 的錐形管里,用 LoTE 緩沖液擴大體積到 11.5 ml, 然后用等體積的 PC8 抽提。
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