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  • 發布時間:2019-04-23 18:40 原文鏈接: 大腸桿菌感受態細胞的制備

    實驗概要

    大腸桿菌感受態細胞的CaCl2法制備及質粒轉化。

    實驗原理

    處于對數生長期的細菌經CaCl2 處理后接受外源DNA的能力顯著增加。細菌處于容易吸收外源DNA的狀態叫感受態。
     

    在自然條件下,很多質粒都可通過細菌接合作用轉移到新的宿主內,但在人工構建的質粒載體中,一般缺乏此種轉移所必需的mob基因,因此不能自行完成從一個細胞到另一個細胞的接合轉移。如需將質粒載體轉移進受體細菌,需誘導受體細菌產生一種短暫的感受態,以攝取外源DNA。
     

    轉化(Transformation)是將外源DNA分子引入受體細胞,使之獲得新的遺傳性狀的一種手段,它是微生物遺傳、分子遺傳、基因工程等研究領域的基本實驗技術。轉化過程所用的受體細胞一般是限制修飾系統缺陷的變異株,即不含限制性內切酶和甲基化酶的突變體(R-,M-),它可以容忍外源DNA分子進入體內并穩定地遺傳給后代。受體細胞經過一些特殊方法(如電擊法,CaCl2,RbCl(KCl)等化學試劑法)的處理后,細胞膜的通透性發生了暫時性的改變,成為能允許外源DNA分子進入的感受態細胞(Compenent cells)。進入受體細胞的DNA分子通過復制、表達實現遺傳信息的轉移,使受體細胞出現新的遺傳性狀。將經過轉化后的細胞在篩選培養基中培養,即可篩選出轉化子(Transformant,即帶有異源DNA 分子的受體細胞)。目前常用的感受態細胞制備方法有CaCl2和RbCl(KCl)法,RbCl(KCl)法制備的感受態細胞轉化效率較高,但CaCl2法簡便易行,且其轉化效率完全可以滿足一般實驗的要求,制備出的感受態細胞暫時不用時,可加入占總體積15%的無菌甘油于-70℃保存(半年),因此CaCl2法使用更廣泛。

     

    主要試劑

    1. 0.1mol/L CaCl2溶液

    2. LB液體培養基

    3. 30%甘油:30mL甘油溶于100mL蒸餾水,高壓滅菌

    主要設備

    1. 超凈工作臺

    2. 冷凍離心機

    3. 恒溫搖床

    4. -70℃冰箱

    5. 10mL移液管

    6. 吸耳球

    7. 1mL、200μL移液槍(配套槍頭)

    8. 50mL 離心管

    9. 1.5mL離心管

     

    實驗材料

    大腸桿菌DH5α(R-,M-,Amp-)

    實驗步驟

    1. 受體菌的培養

       (1) 從LB平板上挑取新活化的E. coli DH5α單菌落,接種于3~5mL LB液體培養基中,37℃下振蕩培養過夜(12h左右);

       (2) 將該菌種懸液以1:100的比例接種,取250μL菌液轉接到25mL LB液體培養基中,37℃振蕩培養2~3h至OD600=0.5左右。
     

    2. 感受態細胞的制備

    (注意:以下操作在超凈工作臺完成。) 

       (1) 將菌液轉入50mL離心管中,冰上放置10min;

       (2) 在4℃下,4000r/min離心10min。棄去上清,將管倒置1min以便培養液流盡;

       (3) 用冰上預冷的0.1mol/L的CaCl2 溶液10mL輕輕懸浮細胞,冰上放置30min;

       (4) 0~4℃ 4000r/min離心10min,棄去上清,加入2mL預冷的0.1mol/L的CaCl2 溶液,輕輕懸浮細胞,冰上放置(務必冰上放置)。

    (注意:以上操作完成了新鮮感受態細胞的制備)
     

    3. 感受態細胞的分裝與凍存

       (1) 在2mL制備好的感受態細胞中加入2mL30%甘油(即1:1體積,甘油終濃度15%);

       (2) 將此感受態細胞分裝成每份200μL (1.5mL dorf管),液氮速凍,快速轉入-70℃冰箱保存。(如果沒有液氮,可以將分裝的感受態細胞直接轉入-70℃冰箱保存。)

     

    注意事項

    1. 細胞的生長狀態和密度
    最好從-70℃或-20℃甘油保存的菌種中直接轉接用于制備感受態細胞的菌液。不要用已 經過多次轉接,及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。即應用對數期或對數生長前期的細菌,可通過測定培養液的OD600控制。對TG1菌株,OD600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意OD600值與細胞數之間的關系隨菌株的不同而不同)。密度過高或不足均會使轉化率下降。 此外,受體細胞一般應是限制-修飾系統缺陷的突變株,即不含限制性內切酶和甲基化酶的突變株。并且受體細胞還應與所轉化的載體性質相匹配。 

    2. 試劑的質量
    所用的CaCl2等試劑均需是最高純度的,并用最純凈的水配制,最好分裝保存于4℃。

    3. 防止雜菌和雜DNA的污染
    整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,并經高壓滅菌處理。所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、DNA酶或雜DNA所污染,否則均會影響轉化效率或雜DNA的轉入。

    4. 整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉化率將會降低。


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