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  • 發布時間:2019-09-12 10:28 原文鏈接: 用大腸桿菌Klenow片段標記合成的寡核苷酸實驗

               

    試劑、試劑盒

    甲酰胺加樣緩沖液 大腸桿菌 DNA 聚合酶 IKlenow 片段 變性聚丙烯酰胺凝膠 寡核苷酸引物 寡核苷酸模板 [α-32P]dNTP

    儀器、耗材

    磷熒光粘貼標簽 水浴或模塊

    實驗步驟


    材料

    溶液和緩沖液
    稀樣貯存液至適當濃度。

    甲酰胺加樣緩沖液
    10XKlenow 緩沖液

    酶與緩沖液

    大腸桿菌 DNA 聚合酶 IKlenow 片段

    凝膠

    變性聚丙烯酰胺凝膠
    丙烯酰胺在凝膠溶液中的比例及電泳條件,依反應混合液中寡核苷酸的大小不同而異,表 10-4 列出一些有用的提示:



    聚丙烯酰胺凝膠通常用 lxTBE(89 mmol/LTris-硼酸,2 mmol/LEDTA) 灌制。電泳亦在此緩沖液中進行。聚丙烯酰胺凝膠灌制的方法與操作詳見方案 1 及第十二章的方案 8。

    核酸和寡核苷酸

    寡核苷酸引物
    用方案 1 所述方法純化引物。為確保有效地標記,反應液中引物濃度應 3~10 倍摩爾過量于 DNA 模板。

    寡核苷酸模板
    用方案 1 所述方法純化寡核苷酸模板。寡核苷酸模板的序列應與所需的放射性標記探針的序列互補。

    放射性化合物

    [α-32P]dNTP
    為保持反應底物的高濃度,應在盡可能小的體積中進行鏈延伸反應因此,最好使用溶于乙醇-水中的放射性標記 dNTP, 而不是溶于緩沖的水溶液中。適量體積的醇溶 [α-32P]dNTP 可在即將用于標記反應的微量離心管中混合及揮發干燥。為最大限度減少前體化合物及探針的放射分解,盡可能在 [32P]dNTP 到達的當天進行探針的放射性標記。

    專用設備

    磷熒光粘貼標簽(有商品供應)或極熱級放射性墨水粘貼標簽放射性墨水是由少量 32P 與防水黑色繪圖墨水混合而成。在本方案中使用的墨水為“極熱級”(手提式小型探測器計數大于 2000cps), 用一纖維尖筆將墨水點于粘貼標簽上。應在纖維尖筆上貼上放射性物質專用標志膠帶,妥善保管。化學發光標簽可替代放射性墨水,可以從 Stratagene(Glogos) 公司購買。
    這種標簽可反復使用多次,但在下一次放射自顯影前須用熒光照射。

    預溫至 80°C 的水浴或模塊。

    附加試劑

    本方案步驟 9 所需要的試劑列于第 5 章的方案 12。

    方法

    1. 計算出能達到比活度的要求及足以使全部模板鏈完全合成所需的 [α-32P]dNTP 量,將其加入微量離心管中(參見本方案的概述)。
    在反應的任一階段,dNTP 的濃度都不能低于 1umol/L 為保持反應底物的髙濃度,應在盡量可能小的體積中進行廷伸反應。

    2. 在離心管中加入適量的寡核苷酸引物和模板寡核苷酸。
    為確保有效的放射性標記,反應液中引物的濃度應 3~10 倍摩爾過量于模板 DNA。

    3. 加入 0.1 體積的 10X Klenow 緩沖液,充分混勻。

    4. 按每 5ul 反應體積 2~4 單位加入 Klenow 片段,充分混勻。14°C 下溫育反應 2~3 h。
    如有必要,反應過程中可取出小置(0.1ul) 樣品,測定可被 10% 三氯乙酸(TCA) 沉淀的放射性的比例來監測反應的進程(參見附錄 8)。

    5. 用等體積甲酰胺加樣緩沖液稀釋反應混合液,于 80°C 加熱 3 分鐘,然后將全部樣品加至變性聚丙烯酰胺凝膠。

    6. 電泳結束后,卸下電泳裝置,將聚丙浠酰胺凝膠黏附于一側的玻璃上(詳細操作見第 12 章的方案 11)。
    警惕:未摻入的 [α-32P]dNTP 可能遷移到下層電泳糟中,使其帶有放射性。此時應將凝膠、玻璃板、緩沖液及電泳裝置均作為放射源處理。應在聚異丁烯酸樹脂防護屏后謹慎處理。

    7. 將凝膠及其背面的玻璃板一起包裹于 Saran 包裝膜內,記下指示染料的位置,用手提式小型探測儀檢測凝膠上含寡核苷酸區域的放射性活度。在樣品的邊緣的包裝膜上粘貼一組放射性墨水或磷光圓點標簽,并用 Scotch 膠帶覆蓋放射性標簽,以防放射性墨水污染膠片夾或增感屏。

    8. 將凝膠在放射自顯影膠片上曝光(見附錄 9)。
    通常摻入探針的放射性活度甚高,獲得膠片圖像的時間僅需數秒。

    9. 膠片顯影后,將放射性墨水的影像和放射性標簽重疊,以定位探針在凝膠上的位置。切下條帶,按第 5 章的方案 12 所述方法回收放射性標記的寡核苷酸。


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